神經(jīng) HRP 示蹤顯色液(TMB 法)
產(chǎn)品簡介:
上個世紀(jì)70年代,Kristensopn 和Olsson報道了HRP可神經(jīng)末梢攝取,經(jīng)軸漿逆行運輸至神經(jīng)元胞體,經(jīng)組織化學(xué)方法可顯示出神經(jīng)元的輪廓,從而開發(fā)出HRP追蹤神經(jīng)元示蹤技術(shù),即為HRP法。3,3',5,5'-四甲基聯(lián)苯胺(TMB)是非常優(yōu)越的酶免試驗顯色劑,能溶解于多種有機溶劑和雙蒸水中,為穩(wěn)定的無色溶液,不適量過氧化脲或雙氧水不緩沖液混勻后,不過氧化物酶作用產(chǎn)生清晰的藍色產(chǎn)物,極易觀察,在辣根過氧化物酶的催化下 , TMB 會產(chǎn)生藍色沉淀,該沉淀不溶于水和乙醇,顯色后呈藍色,可在顯微鏡下觀察。神經(jīng) HRP 示蹤顯色液(TMB 法)是動物經(jīng)麻醉、注入 HRP 后,游離或絡(luò)合型的HRP不氧化劑反應(yīng)生成絡(luò)合物,該絡(luò)合物氧化供氫的TMB顯色劑,呈藍色,在顯微鏡下清晰可見,該檢測法DAB法靈敏。該顯色液僅用于科研領(lǐng)域,不宜用于臨床診斷或其他用途。
產(chǎn)品組成 |
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50T | |
試劑(A): TMB assay buffer | 2×500ml | RT 避 光 |
試劑(B): TMB 顯色液 | 30ml | -20℃ 避 光 |
試劑(C): TMB 增強劑 | 2×1ml | RT |
試劑(D): TMB Wash buffer(20×) | 100ml | RT |
操作步驟(僅供參考):
(一)、準(zhǔn)備工作
1、動物麻醉:多用(3.5%)戊巴比托妥鈉作為麻醉劑,大鼠的麻醉劑量為0.25-0.35ml/100g。
2、導(dǎo)入HRP:有壓力注射法、電泳法以及周圍神經(jīng)系統(tǒng)的注射涂抹等法。
3、確定動物存活期。
4、動物灌注:麻醉后,經(jīng)左心室升主動脈插管行心內(nèi)灌注固定。先用生理鹽水或PBS快速灌注。隨后用4%的多聚甲醛固定液灌注,先快后慢,時間控制在30-40min。最后用10% 蔗糖磷酸緩沖液(pH7.4)。
5、取材:取組織置于 20%的蔗糖磷酸鹽緩沖液中,切片厚度40μm,存于蔗糖磷酸鹽緩沖液備用。
(二)、顯色反應(yīng)
1、配制 TMB 孵育液:取適量的TMB assay buffer 和TMB 顯色液,按TMB assay buffer: TMB 顯色液=39:1 的比例混合,即為TMB孵育液,即配即用,不宜保存。
2、配制TMB顯色工作液:取適量的TMB 孵育液和TMB 增強劑,按TMB孵育液:TMB 增強劑=2000~8000:1 的比例混合(具體比例應(yīng)根據(jù)具體時間摸索確定),即為TMB 顯色工作液,即配即用,不宜保存。
3、配制 1×TMB Wash buffer:取適量的TMB Wash buffer(20×),按TMB Wash buffer: 蒸餾水=1:19 的比例混合,即為1×TMB Wash buffer。室溫保存,6 月有效。
4、切片用蒸餾水清洗 3 次,每次 2min。
5、切片入10ml TMB 孵育液(提前 20℃溫育),避光孵育20min,其間不斷晃動。
6、切片入10ml TMB 顯色工作液(提前 20℃溫育),避光孵育20min,其間不斷晃動。7、漂洗:取 10ml 左右的 1×TMB Wash buffer 漂洗切片 2-3 次,每次 5min。
8、貼片,載玻片用鉻明礬明膠包被,室溫空氣干燥。
9、脫水、透明步驟按如下操作:
①蒸餾水 10s
②70%乙醇 10s
③95%乙醇 10s
④100%乙醇 2 次,每次 10s
⑤二甲苯 2 次,每次 2~5min。
- 中性樹膠封片,顯微鏡下觀察藍色反應(yīng)。
注意事項:
1、如果出現(xiàn)高的反應(yīng)背景或沉淀,表明 TMB底物反應(yīng)過于強烈。
2、所用器皿必須潔凈,避免含有氧化劑或還原劑,否則會產(chǎn)生非特異性反應(yīng)。
3、TMB顯色液避免反復(fù)凍融,以免顯色效率下降。
4、TMB增強劑注意密閉保存,否則顯色效率下降。
有效期: 12 個月內(nèi)有效。