貝克曼庫爾特國際貿(mào)易(上海)有限公司

如何更好的理解光譜流式中的擴(kuò)散誤差(Spreading Error)

時(shí)間:2025-9-23 閱讀:112
分享:
如何更好的理解光譜流式中的擴(kuò)散誤差(Spreading Error)


上篇:原理篇



光譜流式細(xì)胞儀可捕獲熒光染料的完整發(fā)射光譜,從而實(shí)現(xiàn)對(duì)弱表達(dá)marker的檢測(cè)和重疊熒光信號(hào)的分離。然而,當(dāng)來自不同熒光染料的信號(hào)未被準(zhǔn)確分離時(shí),光譜流式結(jié)果可能會(huì)受到解混誤差(Unmixing error)和溢出擴(kuò)散誤差(Spillover spreading error)的影響,進(jìn)而導(dǎo)致數(shù)據(jù)質(zhì)量不佳,這些問題在復(fù)雜的多色Panel中尤為常見。CytoFLEX mosaic光譜檢測(cè)模塊利用高分辨率光譜數(shù)據(jù)和單染樣本對(duì)照,通過先進(jìn)的光譜解析算法,為準(zhǔn)確的識(shí)別和解析不同熒光染料,提供了更好的解決方案。



Unmixing Error

如何更好的理解光譜流式中的擴(kuò)散誤差(Spreading Error)

01

在光譜流式細(xì)胞儀中,當(dāng)我們?cè)谑褂酶囝伾腜anel時(shí),遇到的一大挑戰(zhàn)就是Unmixing Error(如圖1)。這個(gè)問題源于熒光染料的光譜在參考對(duì)照與實(shí)驗(yàn)樣品中的不準(zhǔn)確匹配。因?yàn)楣庾V流式細(xì)胞儀依靠算法來解析具有重疊發(fā)射光譜的熒光染料,因此即使很小的光譜不匹配也會(huì)導(dǎo)致數(shù)據(jù)的顯著誤差。


如何更好的理解光譜流式中的擴(kuò)散誤差(Spreading Error)

圖1:Unmixing Error示例,如箭頭指示,在細(xì)胞群中表現(xiàn)為傾斜的模式


02

Unmixing Error嚴(yán)重的后果之一是Spreading Error的增加,即來自明亮熒光染料的信號(hào)被錯(cuò)誤地分配到其他檢測(cè)通道。這種錯(cuò)誤分配會(huì)導(dǎo)致背景噪聲升高,降低弱表達(dá)或稀有細(xì)胞群的分辨能力,引起實(shí)驗(yàn)結(jié)果的靈敏度和分辨率總體下降。

03

Unmixing Error會(huì)扭曲熒光強(qiáng)度分布,導(dǎo)致信號(hào)分配不準(zhǔn)確;設(shè)門不正確,以及樣品或?qū)嶒?yàn)之間的可變性增加,比如樣本制備的重復(fù)性等,這些因素共同降低了實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)的可靠性和重復(fù)性。


值得注意的是,雖然光譜不匹配是Unmixing Error的主要驅(qū)動(dòng)因素,但其他因素包括不合適的單染對(duì)照,串聯(lián)染料的不穩(wěn)定性,自發(fā)熒光的產(chǎn)生,儀器穩(wěn)定性和不合適的光譜矩陣計(jì)算同樣也會(huì)有影響(如圖2所示)。因此更好的應(yīng)對(duì)Unmixing Error需要謹(jǐn)慎注意Panel設(shè)計(jì),熒光染料的選擇,以及使用能更好匹配實(shí)驗(yàn)樣本的高質(zhì)量單染對(duì)照。


如何更好的理解光譜流式中的擴(kuò)散誤差(Spreading Error)

圖2:Overview of Unmixing Error in Flow Cytometry. This schematic diagram illustrates the concept of Unmixing Error through three interconnected sections: Causes, Consequences, and Mitigation



Spillover Spreading Error

如何更好的理解光譜流式中的擴(kuò)散誤差(Spreading Error)

溢出擴(kuò)散誤差(Spillover Spreading Error) ,源于熒光檢測(cè)的物理和統(tǒng)計(jì)性質(zhì)。當(dāng)一種熒光基團(tuán)的信號(hào)在其他檢測(cè)器中引入了可變性或增加了測(cè)量噪聲,由于共享光譜區(qū)域,會(huì)導(dǎo)致信號(hào)分布更加發(fā)散,使分辨弱表達(dá)或稀有細(xì)胞群體的能力下降,尤其是當(dāng)標(biāo)志物為共表達(dá)時(shí)。(如圖3示例)


如何更好的理解光譜流式中的擴(kuò)散誤差(Spreading Error)

圖3:Spillover Spreading Error示例。此處的擴(kuò)散誤差被視為一種“魚尾狀模式",其中PE-CY5信號(hào)溢出到Alexa Fluor647中中,導(dǎo)致CD3+CD56-的信號(hào)失真并使細(xì)胞群顯得比實(shí)際更寬,進(jìn)一步加劇了信號(hào)重疊,降低了CD3+CD56+ NKT細(xì)胞群的分辨率


Spillover Spreading Error的產(chǎn)生包含多種因素:

光子檢測(cè)的泊松分布性質(zhì):其中較亮的信號(hào)固有地產(chǎn)生更多統(tǒng)計(jì)誤差

檢測(cè)系統(tǒng)的電子噪音

光譜重疊,特別是與明亮的熒光團(tuán)或高表達(dá)的標(biāo)志物共享探測(cè)器


因此即使的光譜解析,Spillover Spreading Error也無法消除,在高維多色實(shí)驗(yàn)和共表達(dá)標(biāo)記的分析中影響尤為明顯。


如何減輕Spillover Spreading Error的影響:

合理的Panel設(shè)計(jì)非常關(guān)鍵:共表達(dá)markers間的熒光素選擇應(yīng)盡量減少擴(kuò)散誤差

使用適當(dāng)?shù)膶?duì)照,如熒光減一對(duì)照(FMO),有助于確定熒光擴(kuò)散誤差對(duì)設(shè)門精度的影響



下表總結(jié)了影響光譜流式細(xì)胞術(shù)中Spillover Spreading Error的綜合因素。


如何更好的理解光譜流式中的擴(kuò)散誤差(Spreading Error)
如何更好的理解光譜流式中的擴(kuò)散誤差(Spreading Error)


下篇:應(yīng)用篇



除了熒光染料,樣本因素,儀器因素,對(duì)照設(shè)置的因素以外,光譜拆分算法對(duì)于Spillover Spreading Error的降低也發(fā)揮了重要的作用。CytoFLEX mosaic光譜模塊為用戶提供了兩種分解算法:經(jīng)典的LSM和貝克曼庫爾特生命科學(xué)專有的混合泊松算法。

LSM算法是簡單和被廣泛使用的方法。它假設(shè)噪聲出現(xiàn)在所有通道的水平是均一的,無論信號(hào)強(qiáng)度如何,所有檢測(cè)器都具有相同的信號(hào)強(qiáng)度方差。然而在實(shí)際情況下,這種假設(shè)通常不成立。比如檢測(cè)器在不同波段的噪音,以及抗體帶來的噪音等,因此導(dǎo)致解析的誤差,進(jìn)而加劇數(shù)據(jù)的溢出擴(kuò)散誤差(Spillover Spreading Error)。

混合泊松算法是基于光子發(fā)射的隨機(jī)性(泊松統(tǒng)計(jì)),對(duì)噪音信號(hào)進(jìn)行建模,提供了更真實(shí)的信號(hào)變異性反饋。

針對(duì)同一組樣本,這兩種算法的表現(xiàn)如何,我們通過一個(gè)案例研究來展示。



案例研究:10色方案設(shè)計(jì)挑戰(zhàn)

如何更好的理解光譜流式中的擴(kuò)散誤差(Spreading Error)

以下的10色實(shí)驗(yàn)采用新鮮人外周血樣本,通過染色和裂紅處理,并在CytoFLEX LX mosaic光譜流式細(xì)胞儀上進(jìn)行了檢測(cè),采用兩種光譜分解算法最小二乘法(LSM)和混合泊松算法(Poisson Hybrid)分別分析結(jié)果。


結(jié)果


如何更好的理解光譜流式中的擴(kuò)散誤差(Spreading Error)
如何更好的理解光譜流式中的擴(kuò)散誤差(Spreading Error)
如何更好的理解光譜流式中的擴(kuò)散誤差(Spreading Error)
如何更好的理解光譜流式中的擴(kuò)散誤差(Spreading Error)
如何更好的理解光譜流式中的擴(kuò)散誤差(Spreading Error)

左右滑動(dòng)查看更多

如何更好的理解光譜流式中的擴(kuò)散誤差(Spreading Error)

圖4:混合泊松算法與LSM算法在減少擴(kuò)散誤差方面的比較。使用一個(gè)10色Panel檢測(cè)人外周血中的主要細(xì)胞亞群,并使用混合泊松算法和LSM算法進(jìn)行解混。(A) 使用LSM(最小二乘法)算法解混的設(shè)門數(shù)據(jù)。(B) 使用混合泊松算法解混的設(shè)門數(shù)據(jù)。(C) 為所選門計(jì)算的相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差 (rSD) 表明混合泊松算法減少了擴(kuò)散,突顯了僅靠溢出擴(kuò)散矩陣 (SSM) 評(píng)估分?jǐn)?shù)未能捕捉到的分辨率改善。(D) 比較兩種算法的SSM表顯示各檢測(cè)器的擴(kuò)散分?jǐn)?shù)差異


圖4A為LSM和圖4B為混合泊松算法,細(xì)胞群P1,P2,P3和P4表現(xiàn)出兩種解析算法之間信號(hào)擴(kuò)散的明顯差異。圖4C定量地說明了不同算法下通道間信號(hào)擴(kuò)散誤差的差異。在光譜解析中,陰性信號(hào)的rSD很重要,因?yàn)樗从沉诵盘?hào)分離的一致性和準(zhǔn)確性,較低的rSD值表明細(xì)胞群更緊密,這對(duì)于高維流式細(xì)胞術(shù)中細(xì)胞群的準(zhǔn)確識(shí)別和定量至關(guān)重要。圖4D所示的溢出擴(kuò)散矩陣 (SSM) 用于測(cè)量一個(gè)熒光染料的信號(hào)干擾到其他檢測(cè)通道的程度,較低的SSM值意味著熒光染料之間的干擾較小,從而產(chǎn)生更干凈的數(shù)據(jù)、更好的細(xì)胞群分離和更可靠的分析結(jié)果。以上結(jié)果均顯示,混合泊松算法提高了光譜解析的效率和準(zhǔn)確性。


需要注意的是,無論使用的抗體是否經(jīng)過滴定,此處顯示的結(jié)果在使用具有更多熒光染料、高度重疊染料或不同類型樣品的不同panel時(shí)可能會(huì)有所不同。建議用戶切換解混算法以確定哪種算法適合其特定要求和實(shí)驗(yàn)條件。也就是說,我們的研究表明,混合泊松算法有助于減少擴(kuò)散誤差,特別是在使用高度重疊染料組合的panel以及并非所有抗體都滴定的panel中。

如何更好的理解光譜流式中的擴(kuò)散誤差(Spreading Error)


如何更好的理解光譜流式中的擴(kuò)散誤差(Spreading Error)
如何更好的理解光譜流式中的擴(kuò)散誤差(Spreading Error)


溢出擴(kuò)散誤差(Spillover spreading error)和解混誤差(Unmixing error)是光譜流式細(xì)胞術(shù)中的主要挑戰(zhàn),尤其是在高維Panel中,這些誤差源于生物和技術(shù)的原因,包括熒光染料亮度、光譜重疊、儀器配置和對(duì)照質(zhì)量等。可以通過優(yōu)化的Panel設(shè)計(jì)和對(duì)照選擇,使擴(kuò)散誤差最小化,這也是確??煽康臄?shù)據(jù)解讀至關(guān)重要的一步。貝克曼庫爾特生命科學(xué)專有的混合泊松算法,使用LSM結(jié)果作為初始參數(shù)估計(jì),然后結(jié)合了信號(hào)和噪聲的泊松特性,可進(jìn)一步降低數(shù)據(jù)的溢出擴(kuò)散誤差。



參考文獻(xiàn)(上下滑動(dòng)閱覽)

如何更好的理解光譜流式中的擴(kuò)散誤差(Spreading Error)

1. Richard Nguyen, Stephen Perfetto, Yolanda D Mahnke et al., Quantifying spillover spreading for comparing instrument performance and aiding in multicolor panel design. Cytometry A. 2013 Mar;83(3):306-15

2. Debajit Bhowmick, Frank van Diepen, Anita Pfauth et al., A gain and dynamic range independent index to quantify spillover spread to aid panel design in flow cytometry. Sci Rep.2021 Oct 15;11(1):20553

3. Andrea Cossarizza, Hyun-Dong Chang, Andreas Radbruch et al., Guidelines for the use of flow cytometry and cell sorting in immunological studies (third edition). Review Eur J Immunol. 2021 Dec;51(12):2708-3145

4. Roederer M. Spectral compensation for flow cytometry: visualization artifacts, limitations, and caveats. Cytometry. 2001 Nov 1;45(3):194-205

5. Niewold P. Evaluating spectral cytometry for immune profiling in viral disease. Cytometry A. 2020 Nov;97(11):1165-1179

6. Laura Ferrer-Font. Panel Design and Optimization for Full Spectrum Flow Cytometry. Methods Mol Biol. 2024;2779:99-124

7. Lily M Park, Joanne Lannigan, Maria C Jaimes. OMIP-069: Forty-Color Full Spectrum Flow Cytometry Panel for Deep Immunophenotyping of Major Cell Subsets in Human Peripheral Blood. Cytometry A. 2020 Oct;97(10):1044-1051.

8. Yaroslava Shevchenko , Isabella Lurje , Frank Tacke, et al. Fluorochrome-dependent specific changes in spectral profiles using different compensation beads or primary cells in full spectrum cytometry. Cytometry A. 2024. PMID: 3851172

9. Peter L Mage 1, Andrew J Konecny 2 3, Florian Mair. Measurement and prediction of unmixing-dependent spreading in spectral flow cytometry panels. bioRxiv. [Preprint]. 2025 May 21:2025

會(huì)員登錄

×

請(qǐng)輸入賬號(hào)

請(qǐng)輸入密碼

=

請(qǐng)輸驗(yàn)證碼

收藏該商鋪

X
該信息已收藏!
標(biāo)簽:
保存成功

(空格分隔,最多3個(gè),單個(gè)標(biāo)簽最多10個(gè)字符)

常用:

提示

X
您的留言已提交成功!我們將在第一時(shí)間回復(fù)您~
撥打電話 產(chǎn)品分類
在線留言