士鋒生物免疫細胞化學的有關(guān)技術(shù)概述

最近更新時間：2013-10-9

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相關(guān)產(chǎn)品：

一、抗體的制備和配制

（一）抗體的制備

這是免疫細胞化學技術(shù)的首要試劑，必需制備具有很高特異性和敏感性的價抗體，這將在本書第二章　中詳述。目前國內(nèi)外市場各種特異性抗體日益增多，許多實驗室直接應用市售產(chǎn)品，現(xiàn)在我國自制抗體種類少，發(fā)展抗體生產(chǎn)十分必要。尤其要定位一種新的抗原物質(zhì)，能夠自制較好。

（二）抗體的配制

包括抗體貯存液和抗體使用液的配制方法。新制備或購進的是原液或凍干品，抗血清為全血清，單克隆抗體是培養(yǎng)上清液或腹水。

1.抗體貯存　　獲得新抗體后，應先根據(jù)生產(chǎn)廠家提供的抗體效價，將其分裝，可每10μl或100μl/支分裝入安瓿或0.25ml帶蓋塑料管中，密封。放入-20。C~40。C冰箱中保存?zhèn)溆?，一般可保?span lang="EN-US">1~2年。小量分裝的抗體可1次用完，避免反復凍融而影響效價的降低。一般用前新鮮配制使用液體，稀釋的抗體不能長時間保存，在4。C可存入1~3天，超過7天效價顯著降低。

2.抗體使用液的配制　　這是任何免疫細胞化學方法中zui重要的一環(huán)，無論是一抗、二抗和各種標記抗體，用前都必須按不同免疫染色方法和抗原性強弱與抗原的多少，稀釋使用的各種抗體原液，以便獲得*免疫染色結(jié)果。

（1）抗體*稀釋度的測定方法：用已知陽性抗原切片，進行免疫染色，將其陽性強度與背景染色強度以“+”表示，可分為++++、+++、++、+、（-）。++++為zui強陽性，+++為強陽性，++為較強陽性，+為弱陽性，（-）為陰性。

①直接測定法：用于測定*抗體的*稀釋度，其它條件穩(wěn)定可靠。將一抗稀釋為1：50、1：100、1：2001：400、1：500等5個稀釋度滴加在陽性抗原切片上，同時設(shè)一替代和陰性對照，結(jié)果如表1-1：

表 1-1 選擇*稀釋抗血清方法

從表中結(jié)果可見，*抗體稀釋到1：400時陽性結(jié)果呈強陽性，背景染色減少，其*稀釋度在1：400~500之間。再作1：420、1：440、1：460、1：480、1：500稀釋后染色，找出*稀釋度。

②棋盤（方陣）測定方法：當測定兩種以上抗體的*配合稀釋度時，必須采用此法（見表1-2）。

表1-2 兩種以上抗體*配合稀釋度選擇表

括號內(nèi)為背景染色結(jié)果

從表中可見*抗體1：1000，第二抗體1：2000接近*稀釋度，再將一 抗體作1：600、1：700、1：800、1：900和1：1000稀釋，即可找出*稀釋度。

（2）抗體稀釋液的配制：常用0.01mol/l pH7.4PBS或TBS緩沖液作抗體稀釋液?？捎靡韵路椒ㄅ渲频目贵w稀釋液，防止抗體效價下降，減少抗體在組織上的非特異性吸附：取0.05mol/l pH7.4 TBS100ml，加溫到60。C，再加入明膠100mg，攪拌溶解后，冷卻至室溫，加入1g牛血清白蛋白，加入NaN3200mg溶解后，過濾，分裝，4。C保存。

抗體的*稀釋度由于各種抗體的效價不同，組織中抗原強弱不一，應根據(jù)不同情況作適當?shù)恼{(diào)整，以取得中等陽性稀釋度為佳，因其既適合于抗原性強和含量多的標本，也可用于抗原性弱的標本。

二、組織材料的處理

組織材料的處理是獲得良好免疫組織化學結(jié)果的前提，必需保證要檢測的細胞或組織取材新鮮，固定及時，形態(tài)保存完好，抗原物質(zhì)的抗原性不丟失、不擴散和被破壞（下節(jié)　詳述）。

三、免疫染色

可在細胞涂片或組織切片上進行免疫染色。一般程序是：①標記抗體與標本中抗原反應結(jié)合;②用PBS洗去未結(jié)合的成分;③直接觀察結(jié)果（免疫熒光直接法）;或顯色后再用顯微鏡觀察（免疫酶直接法）。在此基礎(chǔ)上發(fā)展出間接法，多層法，雙標記法等各種方法，將在本書各有關(guān)章　節(jié)　內(nèi)詳述。

在免疫染色中應特別注意增強特異性染色，減少或消除非特異性染色。在各種免疫染色中都必須注意以下幾個問題：

1.增強特異性染色的方法

（1）蛋白酶消化法：其作用是暴露抗原，增加細胞和組織的通透性，以便抗體與抗原zui大限度的結(jié)合，增強特異性染色和避免非特異性染色。這種方法已廣泛用于各種免疫細胞化學染色，常用的蛋白酶有胰蛋白酶、胃蛋白酶以及鏈霉蛋白酶（pronase）等;也可用3mol/L尿素處理切片，達到酶消化的目的。各種酶的配制和使用方法詳見附錄。酶消化的時間和溫度因各種抗原對消化的敏感性不同，應根據(jù)酶的活性通過預試驗確定，消化的時間還與組織固定的時間有關(guān)，一般是陳舊固定組織所需時間長，以37。C為宜。消化時間短的組織可在室溫中進行。消化處理時間過長能損傷組織，易使切片脫落，應使用切片粘附劑，消化時間盡量縮短。

（2）合適的抗體稀釋度：抗體的濃度是免疫染色的關(guān)鍵，如果抗體濃度過高，抗體分子過多于抗原決定簇，可導致抗體結(jié)合減少，產(chǎn)生陰性結(jié)果。此陰性結(jié)果并不一定缺少抗原，而是由于抗體過量。這種現(xiàn)象類似于凝集反應中的前帶效應（Prozone effect ）。因此，必須使用一系列稀釋作“棋盤式效價滴定”檢測抗體的合適稀釋度，以得到zui大強度的特異性染色和zui弱的背景染色?？贵w稀釋度應根據(jù)：①抗體效價高，溶液中特異性抗體濃度越高，工作稀釋度越高;②一般講，應用的抗體稀釋度越大，溫育時間越長。③抗體中非特異性蛋白含量、只有高稀釋度時才能防止非特異性背景染色;④稀釋用緩沖液的種類、標本的固定和處理過程等也可影響稀釋度。所以合適的稀釋度應根據(jù)自己的情況測定?？贵w的稀釋主要是指*抗體，因為*抗體中特異性抗體合適的嘗試是關(guān)鍵,應用高稀釋度*抗體僅顯示主親和力的特異性染色反應,減少或消除其中交叉抗體反應。

（3）溫育時間：大部分抗體溫育時間為30-60min，必要時可4。C過（約18h）。溫育的溫度常用37。C，也可在室溫中進行，對抗原抗體反應強的以室溫為佳。37。C可增強抗原抗體反應;適用于多數(shù)抗體染色，但應注意在濕盒中進行，防止切片干燥而導致失敗。

（4）多層染色法：對弱的抗原可用間接法（雙層）、PAP和ABC法（三層）、四或五層PAP法或ABC法，或PAP和ABC聯(lián)合染色法等，可以很大程度的提高敏感性，獲得良好結(jié)果。

（5）顯色增敏劑的應用，如在過氧化物酶底物中加入氯化鎳，可提高顯色敏感度4倍。

2.減少或消除非特異性染色的方法　　

組織中非抗原抗體反應出現(xiàn)的陽性染色稱為非特異性背景染色，zui常見的原因是蛋白吸附于高電荷的膠元和結(jié)締組織成分上。zui有效方法是在用*抗體前加制備第二抗體動物之非免疫血清（1：5-1：20）封閉組織上帶電荷基團而除去與*抗體非特異性結(jié)合。必要時可加入2%-5%牛血清白蛋白，可進一步減少非特異性染色。作用時間為10-20min。也可用除制備*抗體以外的其它動物血清（非免疫的）。有明顯溶血的血清不能用，以免產(chǎn)生非特異性染色。免疫熒光染色時，可用0.01%伊文氏蘭（PBS溶液）稀釋熒光抗體,對消除背景的非特異性熒光染色有很好的效果。當然使用特異性高、效價高的*抗體是zui重要的條件。洗滌用的緩沖液中加入0.85%~1%NaCl成為高鹽溶液,充分洗滌切片,能有效的減少非特異性結(jié)合而減少背景染色。

3.顯色反應的控制　　免疫酶染色應注意控制：①成色質(zhì)濃度和溫育時間可調(diào)節(jié)　，增加成色質(zhì)的量和/或增加底物溫育時間，可增加反應產(chǎn)物強度。著色太深可減少溫育反應時間。②過氧化物酶顯色時，H2O2較大濃度將使顯色反應過快而致背景加深;過量H2O2可能抑制酶的活性。

4.復染　　根據(jù)所用的染色方法和呈顯顏色等，可選用適當?shù)膹腿痉椒āＨ珀栃越Y(jié)果呈紅或棕色，則用蘇木素將細胞核染成蘭色，以便定位檢測。也可用1%～2%甲基綠復染。

四、對照

其目的在于證明和肯定陽性結(jié)果的特異性，排除非特異性疑問。主要是針對*抗體對照，常用的對照方法包括：①陽性對照;②陰性對照;③阻斷試驗;④替代對照;⑤空白對照;⑥自身對照;⑦吸收試驗。

（一）陽性對照

用已知抗原陽性的切片與待檢標本同時進行免疫細胞化學染色，對照切片應呈陽性結(jié)果，稱為陽性對照。證明全過程均符合要求，尤其當待檢標本呈陰性結(jié)果時，陽性對照尤為重要。

（二）陰性對照

用確證不含已知抗原的標本作對照，應呈陰性結(jié)果，稱陰性對照，是陰性對照的一種。其實空白、替代、吸收和抑制試驗都屬陰性對照。當待檢標本呈陽性結(jié)果時，陰性對照就更加重要，用以排除假陽性。

五、免疫細胞化學結(jié)果的判斷

對免疫細胞化學結(jié)果的判斷應持科學的慎重態(tài)度，要準確判斷陽性和陰性，排除假陽性和假陰性結(jié)果，必須嚴格對照實驗，對新發(fā)現(xiàn)的陽性結(jié)果，除有對照試驗結(jié)果之外，應進行多次重復實驗，要求用幾種方法進行驗證，如用PAP法陽性，可再用ABC法驗證。必須學會判斷特異性染色和非特異性染色，對初學者更為重要，否則會得出不科學的結(jié)論。特異性染色與非特異性染色的鑒別點主要在于特異性反應產(chǎn)物常分布于特定的部位，如胞漿內(nèi)，也有分布在細胞核和細胞表面的，即具有結(jié)構(gòu)性。特異性染色表現(xiàn)為在同一切片上呈現(xiàn)不同程度的陽性染色結(jié)果。非特異性染色表現(xiàn)為無一定的分布規(guī)律，常為某一部位成片的均勻著色，細胞和周圍的結(jié)締組織均無區(qū)別的著色，或結(jié)締組織呈現(xiàn)很強的染色。非特異性染色常出現(xiàn)在干燥切片的邊緣，有刀痕或組織折疊的部位。在過大的組織塊，中心固定不良也會導致非特異性染色。有時可見非特異性染色和特異性染色同時存在，由于過強的非特異性染色背景不但影響對特異性染色結(jié)果的觀察和記錄，而且令人對其特異性結(jié)果產(chǎn)生懷疑。

（一）陽性細胞的染色特征

免疫細胞化學的呈色深淺可反映抗原存在的數(shù)量，可作為定性、定位和定量的依據(jù)。

（1）陽性細胞染色分布有三種類型：①胞漿;②細胞核;③細胞膜表面。大部分抗原見于細胞漿，可見于整個胞漿或部分胞漿。

（2）陽性細胞分布可分為煙性和彌漫性。

（3）由于細胞內(nèi)含抗原量的不同，所以染色強度不一。如果細胞之間染色強度相同，常提示其反應為非特異性。

（4）陽性細胞染色定位于細胞，且與陰性細胞相互交雜分布;而非特異性染色常不限于單個細胞，而是累及一片細胞。

（5）切片邊緣、刀痕或皺折區(qū)域，壞死或擠壓的細胞區(qū)，膠原結(jié)締組織等，常表現(xiàn)為相同的陽性染色強度，不能用于判斷陽性。

（二）染色失敗的幾種原因

（1）所染的全部切片均為陰性結(jié)果：包括陽性對照在內(nèi)，全部呈陰性反應，原因可能是：①染色未嚴格按操作步驟進行;②漏加一種抗體，或抗體失效;③緩沖液內(nèi)含*，抑制了酶的活性;④底物中所加H2O2量少或失效;⑤復染或脫水劑使用不當。

（2）所有切片均呈弱陽性反應：①切片在染色過程中抗體過濃，或干燥了;②緩沖液配制中未加氯化鈉和pH值不準確，洗滌不*;③使用已變色的呈色底物溶液，或呈色反應時間過長;④抗體溫育的時間過長;⑤H2O2濃度過高，呈色速度過快;⑥粘附劑太厚。

（3）所有切片背景過深;①未用酶消化處理切片;②切片或涂片過厚;③漂洗不夠;④底物呈色反應過久;⑤蛋白質(zhì)封閉不夠或所用血清溶血;⑥使用全血清抗體稀釋不夠。

（4）陽性對照染色良好，檢測的陽性標本呈陰性反應，固定和處理不當是zui常見的原因。

對于陽性結(jié)果的定量判斷常規(guī)方法是根據(jù)呈色深淺和陽性細胞數(shù)量分類計數(shù)，以（-）、+、++、+++等分級和計數(shù)統(tǒng)計?，F(xiàn)在已采用圖象分析計量，本書第九章　將詳細敘述這種使免疫細胞化學的定量成為可能的先進的形態(tài)定量方法。另外，第十章　將詳細途述另一種先進的免疫細胞化學計量分類術(shù)-流式細胞光度計技術(shù)

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