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士鋒生物凝膠層析法測(cè)定蛋白質(zhì)相對(duì)分子質(zhì)量
最近更新時(shí)間:2013-11-5
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實(shí)驗(yàn)步驟
1.凝膠溶脹
凝膠顆粒要求大小比較均勻 ,可流速穩(wěn)定,結(jié)果較好。
取葡聚糖Sephardex G-75干粉,加過(guò)量的蒸餾水室溫充分溶脹一天(溶脹時(shí)間因凝膠交聯(lián)度不同而不同),或沸水浴中溶脹3小時(shí),這樣可大大縮短溶脹時(shí)間,而且可以殺死細(xì)菌和霉菌,并可排出凝膠內(nèi)氣泡。溶脹過(guò)程中注意不要過(guò)分?jǐn)嚢?,以防顆粒破碎。待溶脹平衡后用傾瀉法除去不易沉下的細(xì)小顆粒,zui后凝膠經(jīng)減壓抽氣除去氣泡,即可準(zhǔn)備裝柱。
2. 裝柱與平衡
裝柱前須將凝膠上面過(guò)多的溶液傾出,將層析柱垂直裝好。關(guān)閉出口,向柱管內(nèi)加入約1/3柱容積的洗脫液,然后在攪拌下,將濃漿狀的凝膠連續(xù)地傾入柱中,使之自然沉降,待凝膠沉降約2—3cm后,打開(kāi)柱的出口,調(diào)節(jié)合適的流速,使凝膠繼續(xù)沉集,待沉集的膠面上升到離柱的頂端約5cm處時(shí)停止裝柱,關(guān)閉出水口。裝柱要求連續(xù)、均勻、無(wú)氣泡、無(wú)“紋路”。
將洗脫劑與恒流泵相連,恒流泵出口端與層析柱相連。通過(guò)2—3倍柱床容積的洗脫液使柱床平衡,然后在凝膠表面上放一片濾紙或尼龍濾布,以防將來(lái)在加樣時(shí)凝膠被沖起,并始終保持凝膠上端有一段液體。
3. 上樣與洗脫
樣品上柱是實(shí)驗(yàn)成敗的關(guān)鍵之一,若樣品稀釋或上柱不均,會(huì)使區(qū)帶擴(kuò)散,影響層析效果。上樣時(shí)應(yīng)盡量保持床面的穩(wěn)定。先打開(kāi)柱的出口,待柱中洗脫液流至距床表面1~2mm時(shí),關(guān)閉出口,用滴管將1ml樣品慢慢地加至柱床表面,應(yīng)避免將床面凝膠沖起,打開(kāi)出口并開(kāi)始計(jì)算流出體積,當(dāng)樣品滲入床中接近床表面1mm時(shí)關(guān)閉出口。按加樣操作,用少量(約1ml)洗脫液沖洗管壁2次。zui后加入少量洗脫液于凝膠上,使高出床表面3~5cm,旋緊上口螺絲帽,柱進(jìn)水口連通恒流泵,調(diào)好流速,以每管3ml/10min流速開(kāi)始洗脫。上樣的體積,分析用量為柱床容積的1—2%;制備用量為柱床容積的20%~30%。
4. 收集與鑒定
用自動(dòng)部分收集器收集流出液,每管4ml,紫外檢測(cè)儀280nm波長(zhǎng)處檢測(cè),zui高的一個(gè)OD值時(shí)的體積即為吸收峰的洗脫體積Ve。
5.凝膠柱的處理
凝膠用過(guò)后,反復(fù)用蒸餾水洗后保存,如果有顏色或比較臟,可用0.5mol/LNaCl洗滌。短期可保存在水相中,加入防腐劑或加熱滅菌后于低溫保存。建議長(zhǎng)期用干燥狀態(tài)保存。
計(jì)算
分子量的測(cè)定和計(jì)算,一般都采用標(biāo)準(zhǔn)曲線法。只要測(cè)得幾種標(biāo)準(zhǔn)蛋白質(zhì)相對(duì)分子質(zhì)量的Ve,并以它們的相對(duì)分子質(zhì)量的對(duì)數(shù)(logMr)對(duì)Ve作圖得一直線,再測(cè)出待測(cè)樣品的Ve,即可從圖中確定它的相對(duì)分子質(zhì)量。
注意事項(xiàng)
各接頭不能漏氣,連續(xù)用的小乳膠管不要有破損,否則造成漏氣、漏液。注意恒壓瓶?jī)?nèi)的排氣管應(yīng)無(wú)液體,并隨著柱下口溶液的流出不斷有氣泡產(chǎn)生,則表示恒壓瓶不漏氣。操作過(guò)程中,層析柱內(nèi)液面不斷下降,則表示整個(gè)系統(tǒng)有漏氣之處,應(yīng)仔細(xì)檢查并加以糾正。
始終保持柱內(nèi)液面高于凝膠表面,否則水分揮發(fā),凝膠變干。也要防止液體流干,使凝膠混入大量氣泡,影響液體在柱內(nèi)的流動(dòng),導(dǎo)致分離效果變壞,不得不重新裝柱。