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淋巴細(xì)胞轉(zhuǎn)化試驗(yàn)技術(shù):形態(tài)學(xué)檢查法

最近更新時(shí)間:2013-11-18

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(一)材料與試劑
1.小牛血清 取新生的小牛,無(wú)菌采血,分離血清。于56℃滅活后分裝小瓶,放入低溫冰箱保存。
2.雙抗 配成每毫升含青霉素1.00×104U,鏈霉素1.00×104U的混合液。存放于-20℃。
3.6%NaHCO3水溶液
4.肝素 以滅菌生理鹽水配成500U/ml,115℃滅菌30min,4℃保存?zhèn)溆谩?
5.PHA 以滅菌生理鹽水配成1 000µg/ml,經(jīng)G-5漏斗過(guò)濾,分裝小瓶,保存于-20℃?zhèn)溆谩?
6.姬姆薩染液、瑞氏染液。
7.pH6.4磷酸鹽緩沖液:
KH2PO4 6.62g
Na2HPO4 2.56g
H2O 1 000.00ml
8.營(yíng)養(yǎng)液 采用199營(yíng)養(yǎng)液或RPMI-1640營(yíng)養(yǎng)液,配法如下:
199營(yíng)養(yǎng)液 79.00ml
小牛血清 20.00ml
“雙抗” 1.00ml
依次加入后,再用高壓滅菌的6% NaHCO3液調(diào)pH至7.2~7.3,分裝小瓶,每 瓶0.2ml。
(二)操作方法
1. 于培養(yǎng)瓶?jī)?nèi)加0.2ml馬血,對(duì)照組與試驗(yàn)組各做2瓶,試驗(yàn)組均加PHA 30µg;
2.37℃培養(yǎng)72h,每天輕搖1~2次;
3.取出培養(yǎng)瓶,搖散血塊,倒入離心管,3 000r/min離心10min,去上清液;
4.用血球泥制備推片,晾干;
5.以瑞氏染液染2min~3min,加等量緩沖液,混勻繼續(xù)染3min,蒸餾水沖洗后再用姬姆薩染液染2min~3min。加等量緩沖染液感作7min~8min,餾水沖洗,晾干;
6.鏡檢,觀察,計(jì)數(shù)。
(三)結(jié)果判定
在油鏡下,觀察淋巴細(xì)胞的形態(tài)變化(見(jiàn)表21-1),以頭、體、尾三部分計(jì)算,至少計(jì)數(shù)100個(gè)或200個(gè)淋巴細(xì)胞,然后按公式計(jì)算出淋巴細(xì)胞形態(tài)轉(zhuǎn)化率。
成年馬的淋巴細(xì)胞轉(zhuǎn)化率,根據(jù)原獸醫(yī)大學(xué)20例檢查,平均為35.58%。

不加PHA的對(duì)照組一般不轉(zhuǎn)化或轉(zhuǎn)化率只在1%左右。
表21-1 淋巴細(xì)胞轉(zhuǎn)化前后形態(tài)學(xué)特點(diǎn)

轉(zhuǎn)化淋巴細(xì)胞的形態(tài)特征:①體積增大,約大于原成熟的淋巴細(xì)胞的2~3倍;②細(xì)胞核膜清晰,核內(nèi)染色質(zhì)疏松呈網(wǎng)狀結(jié)構(gòu),可見(jiàn)1~3個(gè)核仁,有的核呈分裂相;③胞漿豐富,有嗜堿性染色,核周圍的胞漿有一些淡染的透明帶,細(xì)胞呈偽足狀突起。
(四)注意事項(xiàng)
1.培養(yǎng)液zui適pH為7.2~7.4,過(guò)酸過(guò)堿都會(huì)影響細(xì)胞的生長(zhǎng)而降低轉(zhuǎn)化率。培養(yǎng)液的類型與動(dòng)物的白細(xì)胞有關(guān),如小鼠的淋轉(zhuǎn)試驗(yàn),用RPMI-1640,用199液則不成功。
2.培養(yǎng)時(shí)間 以72h~120h轉(zhuǎn)化率zui高,超過(guò)這個(gè)時(shí)間,則轉(zhuǎn)化率反而下降。
3.吞噬細(xì)胞有時(shí)在形態(tài)上易與“過(guò)渡型”混淆。但巨噬細(xì)胞有其固有的特點(diǎn),核占細(xì)胞比較小且偏一邊,核染色質(zhì)濃集,細(xì)胞漿呈藍(lán)灰色或紅褐色,胞漿內(nèi)有大小不等的顆?;蛲淌晌铮液写笮〔坏鹊臍馀?。
4.涂片要少蘸些細(xì)胞,推出尾部來(lái),因淋巴細(xì)胞較大,易集中在尾部及邊緣。
5.觀察淋巴細(xì)胞轉(zhuǎn)化,染色不要太濃,以便觀察核仁。
6.嚴(yán)格的無(wú)菌操作,是淋巴細(xì)胞轉(zhuǎn)化試驗(yàn)成功的關(guān)鍵。

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