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血液/細(xì)胞/組織基因組DNA提取試劑盒說(shuō)明書(shū)

時(shí)間:2021/4/12閱讀:1953
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產(chǎn)品簡(jiǎn)介

      本試劑盒采用可以特異性結(jié)合DNA的離心吸附柱和*的緩沖液系統(tǒng),提取多種細(xì)胞中的基因組DNA。離心吸附柱中采用的硅基質(zhì)材料為本公司*新型材料,高效、專(zhuān)一吸附DNA,可最大限度去除雜質(zhì)蛋白及細(xì)胞中其他有機(jī)化合物。提取的基因組DNA段大,純度高,質(zhì)量穩(wěn)定可靠。

    使用本試劑盒回收的DNA可適用于各種常規(guī)操作,包括酶切、PCR、文庫(kù)構(gòu)建、Southern雜交等實(shí)驗(yàn)。

產(chǎn)品特點(diǎn):

簡(jiǎn)單快速:1 h內(nèi)即可獲得超純的基因組DNA

泛:適用于血液、多種動(dòng)物細(xì)胞和動(dòng)物組織等。

純:獲得的DNA純度高,可直接用于PCR、酶切、雜交等分子生物學(xué)實(shí)驗(yàn)。

注意事項(xiàng) 請(qǐng)務(wù)必在使用本試劑盒之前閱讀此注意事項(xiàng)。

1. 使用前應(yīng)按照試劑瓶標(biāo)簽的說(shuō)明先在緩沖液GD和漂洗液PW中加入無(wú)水乙醇。

2. 樣品應(yīng)避免反復(fù)凍融,否則會(huì)導(dǎo)致提取的DNA段較小且提取量也下降。

3. 若緩沖液GAGB中有沉淀,可在37℃水浴中重新溶解,搖勻后使用。

4. 所有離心步驟均為使用臺(tái)式離心機(jī),室溫下離心。

 操作步驟

使用前請(qǐng)先在緩沖液GD和漂洗液PW中加入無(wú)水乙醇,加入體積請(qǐng)參照瓶上的標(biāo)簽。

1. 處理材料

a. 如提取材料為血液,可直接使用200 μl新鮮、冷凍或加入各種抗凝劑的血液,不足200 μl

可加緩沖液GA補(bǔ)足;

注意:如需處理更大體積血液,如300 μl-1 ml,應(yīng)按以下步驟操作:在樣品中加入3倍體積紅細(xì)胞裂解液 (例如,300 μl血液加入900 μl紅細(xì)胞裂解液),顛倒混勻, 室溫放置5 min,期間再顛倒混勻幾次。10000 rpm(~11,500×g)離心1 min(若離心機(jī)高轉(zhuǎn)速不允許,可3000 rpm(~3,400×g)離心5 min),吸去上清,留下白細(xì)胞沉淀,加200 μl緩沖液GA,振蕩至*混勻。

紅細(xì)胞裂解液本公司另外有售(目錄號(hào):RT122),可根據(jù)需要來(lái)決定購(gòu)買(mǎi)。

b. 如果處理血樣為禽類(lèi)、鳥(niǎo)類(lèi)、兩棲類(lèi)或更低級(jí)生物的抗凝血液,其紅細(xì)胞為有核細(xì)胞,因此處理量5-20 μl,可加緩沖液GA補(bǔ)足200 μl后進(jìn)行下面的裂解步驟。

c. 貼壁培養(yǎng)的細(xì)胞應(yīng)先處理為細(xì)胞懸液,然后10,000 rpm(~11,200×g)離心1 min,倒盡上清,加200 μl緩沖液GA,振蕩至*懸??;

d. 動(dòng)物組織(脾組織用量應(yīng)少10 mg)應(yīng)先打碎處理為細(xì)胞懸液,然后10,000 rpm(~11,200×g)離心1 min,倒盡上清,加200 μl緩沖液GA,振蕩至*懸浮。

注意:如果需要去除RNA,可加入4 μl RNaseA100 mg/ml)溶液(客戶(hù)自備,目錄號(hào):RT405-12),振蕩15 sec,室溫放置5 min

2. 加入20 μl Proteinase K溶液,混勻。

a. 提取血液基因組時(shí),只需加入Proteinase K混勻,即可繼續(xù)進(jìn)行下一步。

b. 提取細(xì)胞基因組時(shí),只需加入Proteinase K混勻,即可繼續(xù)進(jìn)行下一步。

c. 提取組織基因組時(shí),加入Proteinase K混勻后,在56℃放置,直至組織溶解,簡(jiǎn)短離心以去除管蓋內(nèi)壁的水珠,再進(jìn)行下一步驟。

注意:不同組織裂解時(shí)間不同,通常需1-3 h即可完成(鼠尾需要消化過(guò)夜)。不會(huì)影響后續(xù)操作。每小時(shí)顛倒混合樣品2-3次,用水浴振蕩器也可。

3.加入200 μl緩沖液GB,充分顛倒混勻,70℃放置10 min,溶液應(yīng)變清亮,簡(jiǎn)短離心以去除管蓋內(nèi)壁的水珠。

注意:加入緩沖液GB時(shí)可能會(huì)產(chǎn)生白色沉淀,一般70℃放置時(shí)會(huì)消失,不會(huì)影響后續(xù)實(shí)驗(yàn)。如溶液未變清亮,說(shuō)明細(xì)胞裂解不*,可能導(dǎo)致提取DNA量少和提取出的DNA不純。當(dāng)血液體積≤200 μl且沒(méi)有采用紅細(xì)胞裂解處理,或是樣本儲(chǔ)存條件不佳,水浴后顏色可能為深褐色,注意溶液中沒(méi)有團(tuán)塊等沉淀。

4.加人200 μl 無(wú)水乙醇,充分振蕩混勻15 sec,此時(shí)可能會(huì)出現(xiàn)絮狀沉淀,簡(jiǎn)短離心以去除管蓋內(nèi)壁的水珠。

5.將上一步所得溶液和絮狀沉淀都加入一個(gè)吸附柱CB3吸附柱放入收集管中, 12,000 rpm (~13,400×g)離心30 sec,倒掉廢液,將吸附柱CB3放回收集管中。

6.向吸附柱CB3中加入500 μl緩沖液GD 使用前請(qǐng)先檢查是否已加入無(wú)水乙醇)12,000 rpm (~13,400×g)離心30 sec,倒掉廢液,將吸附柱CB3放入收集管中。

7.向吸附柱CB3中加入600 μl 漂洗液PW使用前請(qǐng)先檢查是否已加入無(wú)水乙醇, 12,000 rpm (~13,400×g)離心30 sec,倒掉廢液,將吸附柱CB3放入收集管中。

8.. 重復(fù)操作步驟7。

9.將吸附柱CB3放回收集管中,12,000 rpm(~13,400×g)離心2 min,倒掉廢液。將吸附柱CB3置于室溫放置數(shù)分鐘,以*晾干吸附材料中殘余的漂洗液。

注意:這一步的目的是將吸附柱中殘余的漂洗液去除,漂洗液中乙醇的殘留會(huì)影響后續(xù)的酶反應(yīng)(酶切、PCR等)實(shí)驗(yàn)。

10.將吸附柱CB3轉(zhuǎn)入一個(gè)干凈的離心管中,向吸附膜的中間部位懸空滴加50-200 μl洗脫緩沖液TE,室溫放置2-5 min,12,000 rpm (~13,400×g)離心 2 min,將溶液收集到離心管中。

注意:洗脫緩沖液體積不應(yīng)少于50 μl,體積過(guò)小影響回收效率。洗脫液的pH值對(duì)于洗脫效率有很大影響。若用ddH2O做洗脫液應(yīng)保證其pH值在7.0-8.5范圍內(nèi),pH值低于7.0會(huì)降低洗脫效率;且DNA產(chǎn)物應(yīng)保存在-20℃,以防DNA降解。為增加基因組DNA 的得率,可將離心得到的溶液再加入吸附柱CB3中,室溫放置2 min,12,000 rpm (~13,400×g )離心2 min

 

 

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