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細(xì)胞線粒體分離試劑盒說(shuō)明書

時(shí)間:2021/11/30閱讀:1025
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    產(chǎn)品簡(jiǎn)介:

線粒體是細(xì)胞呼吸的主要場(chǎng)所,細(xì)胞活動(dòng)所需的能量主要由在線粒體內(nèi)進(jìn)行的氧化所產(chǎn)生的能量來(lái)供應(yīng)。制備線粒體的關(guān)鍵是保持線粒體的完整性和純度,可通過(guò)分級(jí)分離法獲得, 即先低速離心除去細(xì)胞核以及細(xì)胞碎片,再進(jìn)行高速梯度離心分離線粒體。

 細(xì)胞線粒體分離試劑盒(Cell Mitochondria Isolation Kit)是快速便捷分離培養(yǎng)細(xì)胞中的線粒體的試劑盒,分離線粒體的同時(shí)可以獲得去除線粒體的細(xì)胞漿蛋白,可用于分析細(xì)胞色素C 等線粒體蛋白向胞漿的釋放,大部分獲得的線粒體都含有完整的內(nèi)膜和外膜,并具有線粒體的生理功能(如檢測(cè)線粒體膜電位),獲得的蛋白可用于 SDS-PAGE、Western、雙向電泳等蛋白分析。該試劑盒僅用于科研領(lǐng)域,不宜用于臨床診斷或其他用途。

自備材料:

1、 胰蛋

2、 低溫機(jī)、漿器

3、 PBS

操作步驟(僅供參考)

1、清洗:用預(yù)冷的 PBS 清洗細(xì)胞 1 次,4℃ 1000g 離心 5min,棄上清。

2、裂解:沉淀用1~2ml 預(yù)冷的Mitochondria Lysis buffer 重懸細(xì)胞,冰浴放置10~15min, 可用相差顯微鏡檢測(cè)膨脹的程度。

3、勻漿:把細(xì)胞懸液轉(zhuǎn)移至 Dounce 勻漿器中,勻漿 10~20 次。不同細(xì)胞或不同勻漿器所需的勻漿次數(shù)有所不同,需自行優(yōu)化。


4、取勻漿液,立即加入等量 Wash buffer,輕輕顛倒混勻數(shù)次。

5、4℃ 1300g 離心 5min 以去除細(xì)胞核、未破碎的細(xì)胞和大的膜碎片。

6、上清液轉(zhuǎn)移至一干凈離心管,4℃ 1000g 離心 5min,重復(fù) 2 次。

7、上清液轉(zhuǎn)移至一干凈離心管,4℃ 12000~15000g 離心 15min,重復(fù) 1 次。

8、棄上清,沉淀為線粒體。如果希望獲得去除線粒體的細(xì)胞漿蛋白,應(yīng)在本步驟中收集上清,并且在收集上清時(shí)注意勿觸及沉淀,隨后把收集的上清 12000g 4℃離心 10min,上清即為去除線粒體的細(xì)胞漿蛋白。

9、保存:棄上清,用適當(dāng)緩沖液懸浮沉淀。如果用于線粒體酶活性或功能的分析,線粒體沉淀應(yīng)重懸于 Mitochondria Stock buffer;如果用于細(xì)胞漿蛋白的分析,獲得的細(xì)胞漿蛋白應(yīng)保存于 1×Protein Stock buffer,即按細(xì)胞漿蛋白:Protein Stock buffer (5×)=4:1 比例混合;如果用于雙向電泳,應(yīng)使用恰當(dāng)?shù)谋4嬉骸?/span>

 注意事項(xiàng):

1、細(xì)胞計(jì)數(shù)   (如臺(tái)盼藍(lán)染色液)對(duì)于不同實(shí)驗(yàn)不必全部使用,實(shí)驗(yàn)條件成熟后可以不用。

2、如果不是用于制備線粒體蛋白,Mitochondria Lysis buffer 和Wash buffer 中不必加

PMSF。如果用于制備線粒體蛋白樣品,Mitochondria Lysis buffer  Wash buffer 中需添加 PMSF。PMSF 一定要在試劑加入到樣品中前 1~2min 內(nèi)加入,以免 PMSF 在水溶液中失效

3、分離線粒體的所有步驟均需在冰上或 4℃進(jìn)行,所用溶液需冰浴或 4℃預(yù)冷,全部操作時(shí)間盡量控制在 1h 以內(nèi)。

4、通常在分離線粒體時(shí)前后兩次離心速度選取 1000g 和 15000g,如果希望純度更高,但對(duì)線粒體的得率要求不高,前后兩次離心速度可用 2000g 和 6000g。

5、為了您的安全和健康,請(qǐng)穿實(shí)驗(yàn)服并戴一次性手套操作。


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