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人胰蛋白酶(Trypsin)檢測試劑盒(ELISA方法)

本試劑盒采用夾心法酶聯(lián)免疫吸附法，用于體外定量分析人血清、血漿、細胞裂解液或細胞培養(yǎng)上清中Pan Trypsin的含量。預先包被的抗體為Pan Trypsin單克隆抗體。檢測相抗體為Pan Trypsin多克隆抗體，經生物素標記。樣品和生物素標記抗體先后加入酶標板孔反應后，PBS或TBS洗滌。隨后加入過氧化物酶標記的親和素反應；經過PBS或TBS的*洗滌后用底物TMB顯色。TMB在過氧化物酶的催化下轉化成藍色，并在酸的作用下轉化成終的黃色。顏色的深淺和樣品中的人Pan Trypsin呈正相關。

檢測指標：Pan Trypsin
檢測范圍：31.2pg/ml～2000pg/ml
特異性：系統(tǒng)和其它細胞因子無交叉反應
敏感性：＜5pg/ml

產品組成：

儲存條件：2-8℃（頻繁使用時），-20℃（長時間不用時）。
有效期：6個月(4℃)；12個月（-20℃）。

參考標準曲線數(shù)據：(取自某一批次質檢數(shù)據，僅供參考，用戶需要自己建立標準曲線)

人胰蛋白酶(Trypsin)檢測試劑盒(ELISA方法)原理:

問：同一樣品多次活性測試結果差異大怎么解決？

答：樣本保存不當，會導致多次實驗結果偏差較大，樣本應盡量減少反復凍融，如需多次檢測，需在取樣后分裝保存。

問：檢測樣本是細胞培養(yǎng)上清，那么細胞數(shù)目對炎癥因子的濃度有影響嗎？

答：有影響，所以不同樣本可以比較的前提條件是培養(yǎng)細胞數(shù)水平接近一致。

問：請問標曲是每次都要做嗎？

答：是的，每次實驗，孵育時間，洗板次數(shù)等等條件均不一樣，不同實驗的標曲不能混用，做一次實驗需要做一次標準曲線，并且用當次，同一塊板上的標準曲線結果去計算板內樣品的濃度，才能得到準確的結果。

問：做預實驗時每種要做幾個復孔呀？

答：預實驗視情況而定，如果整個板子孔數(shù)較為充足，建議兩個復孔，如不充足，單孔也可以。要盡量保證實驗過程中加樣準確。

問：血清樣本少量溶血，顏色稍深，對結有影響嗎？

答：會有影響，建議取樣時需注意，避免溶血、脂血等樣本。如樣本條件受限，建議用樣本稀釋液適當稀釋，減少基質效應影響。

問：試劑盒有推薦稀釋濃度還需要自己測嗎？

答：試劑盒一般會給出不同樣品的推薦稀釋比例，但是為大致范圍，還是根據自己的樣本情況，設計預實驗測量計算。

問：加完終止液之后測的幾次數(shù)據差別也蠻大？

答：加完終止液后，顯色反應也不是永遠停止，形成的黃色顏色會隨著時間延長繼續(xù)加深，建議在15 min內讀數(shù)。

問：副孔差別比較大，是沒洗干凈嗎？

答：復孔值差異較大，主要原因應考慮加樣是否準確，洗板過程中是否有殘留以及是否有交叉污染。

問：配好的抗體沒用完如何保存，可保存多久？預實驗用了一個試劑盒里面的部分板子和試劑，剩下的板子和試劑還能繼續(xù)用于正式實驗嗎？

答：一般來講，配好的母液，可以在四度保存，多一個月左右。剩下的板子和試劑是可以繼續(xù)用于正式實驗的，間隔時間不要太長，一個月之內均可，需注意試劑避免污染，板子保持干燥。

問：后顯示的OD值在多少之間屬于可用值，有要求嗎？

答：有的，建議標準曲線高濃度點的OD值在2.0左右較好，也可參考說明書標曲的數(shù)據。

問：樣本總是在標準曲線之外，稀釋100倍也是，怎么辦？

答：在設置稀釋倍數(shù)之前，需要參考相關文獻，對于一些表達*的蛋白，確實會出現(xiàn)這種情況，建議繼續(xù)提高稀釋比例。

問：試劑盒推薦用450和540nm雙波長檢測，但條件有限可否換成450和620的雙波長？如何使用校準波長？還有，用空白孔校準可以么？

答：可以的，TMB底物顯色后，吸光峰值在450nm，另外的校準波長是防止氣泡等雜質造成的干擾設置，避開450左右50nm以上即可。兩次讀取的OD值，用OD450 - OD校準波長即可。盡量還是建議有條件的選用雙波長校準的方法，因為避免了不同孔的讀數(shù)影響，防止出現(xiàn)空白孔污染，導致讀數(shù)較高，無法校準的情況。

問：ELISA可以檢測胞內蛋白么？

答：可以的，選用支持組織勻漿的ELISA試劑盒即可，將組織樣品或細胞樣品進行裂解，提取胞內蛋白后進行蛋白定量，保證每孔上樣總蛋白量一致即可。

問：ELISA試劑盒顯色液是雙組份的，有些其他品牌的是單組分的，使用單組分的有影響么？

答：HRP酶標二抗的ELISA試劑盒，顯色底物一般為TMB，TMB不穩(wěn)定，曝光或污染氧化后會出現(xiàn)顯色反應，導致實驗背景升高，或無法使用，所以愛必信的ELISA試劑盒將顯色液調整為雙組份，方便穩(wěn)定保存，僅在使用前混合，避免了TMB的不穩(wěn)定影響實驗結果。如您選用的試劑盒為單組分顯色液，在使用前檢測是否為無色透明，如果是正常的，對結果也沒有影響，可以放心使用。

問：整個過程需要避光嗎？避光需要避到什么程度呢？

答：ELISA實驗中，在酶標抗體孵育，以及顯色底物孵育這兩步建議避光，其他步驟無需避光。避光可采用錫紙包裹，或將整個ELISA板子放入暗盒或抽屜等無光處即可。

問：標準曲線在推薦的濃度下，r值為0.9，做了多次都是這樣，怎么辦？

答：要仔細核對產品說明書，看是否用了推薦的擬合方法，如愛必信的ELISA試劑盒，需要使用四參數(shù)擬合方式進行擬合，用錯擬合方式，會導致r方值較低；如擬合方式無誤，需檢查是否有個別標曲孔數(shù)值異常，排查實驗中是否出現(xiàn)污染或倍比稀釋時出現(xiàn)失誤。

問：封板膜什么時候用？每次加液后都要換嗎？

答：封板膜在孵育樣品、檢測抗體以及HRP酶標抗體是，都要蓋好封板膜，減少揮發(fā)及污染幾率。每次使用后要更換新的封板膜。

問：手動洗板過程中，拍過抗體或抗原的濾紙需要扔嗎？

答：是需要更換的，防止造成交叉污染，影響實驗結果的準確性。

問：有的wash buffer析出結晶后在37℃也不溶解，怎么辦？

答：可提高至55度，并多次搖晃。溶解后按比例稀釋即可使用。

問：測得的值都低于標準曲線的低值，是什么原因，應該怎么解決？

答：原因較多，首先是檢查樣品是否稀釋倍數(shù)過高，降低稀釋比，直至直接加樣本原液，如還檢測不出，需排查原因，建議在實驗組別設置中添加陽性對照孔，用明確表達的樣品作為陽性對照，如果標準曲線及陽性樣品均可測得正常的表達濃度，則表明實驗成功，其余待測樣品表達含量低于檢測下限，按照0計算即可。這種情況尤其對于炎癥因子較為常見，在健康樣本中，表達含量極低。

問：因為檢測限的原因，同一塊ELISA板子，部分樣本稀釋，部分樣本1:10稀釋，部分1:20稀釋，這樣設置可行嗎？結果可以比較嗎？

答：可以比較，不同稀釋比例，是因為不同樣本間的表達差異較大，只要保證稀釋后的檢測樣品測量值準確，還原回稀釋倍數(shù)后的濃度是可信的?？梢杂脕肀容^不同樣本的原始濃度差。

問：試劑盒里面有捕獲抗體么？

答：即用型ELISA試劑盒中，捕獲抗體已經預包被至試劑盒中的ELISA板上，沒有單獨的捕獲抗體提供，直接使用ELISA板孵育稀釋后的樣本及標準品即可。

問：ELISA實驗中，檢測計算抗原的濃度，臨界值怎么確定？

答：根據曲線測定的濃度，建議落在標準曲線的中間位置較好，極限不要超過標準曲線的上下限，如果超出較多，會影響計算結果準確性，建議調整稀釋比例。

問：In vivo周期長的話，不太好做預實驗，怎么辦？

答：In vivo造模取樣后，可將樣品分裝，取一部分樣品做ELISA預實驗，剩余樣品再進行正式實驗；如多批次實驗，操作較為一致，后續(xù)可取消預實驗，根據前期結果進行ELISA實驗濃度設置。

問：做實驗前怎么知道待測血清中炎癥因子的范圍呢？多大是高多小是低？

答：需要根據文獻推測，一般在健康人樣本中，炎癥因子表達很低，接近ELISA檢測下限，樣品無需稀釋或1:1稀釋即可，如已知為炎癥疾病或造模樣本，可參考文獻，在預實驗中設置1:10-100（或更高）的稀釋比例，預實驗檢測后確定佳濃度進行正式實驗。

問：ELISA實驗中的洗板步驟如果沒有洗板機，需要如何操作？

答：實驗室ELISA實驗做的較多，還是建議使用洗板機洗板，效果更好，也更方便控制。如果沒有洗板機，在洗板過程中，需要注意洗板液添加后不要從孔中溢出，在加洗板液后，靜置1-2min，甩干液體后，在吸水紙上大力拍干；重復三次。

問：ELISA實驗中，酶標抗體識別的是哪個抗體？

答：在雙抗夾心法ELISA中，酶標抗體識別的是檢測抗體，對檢測抗體進行識別和酶標記。

問：捕獲抗體如何包被在96孔板上？

答：如果選用的是即用型ELISA試劑盒，無需進行抗體包被；如果是非即用型的ELISA試劑盒，首先，要選擇ELIS*別的板子，材質應為聚苯乙烯；然后用抗體包被液稀釋（pH9.6的碳酸鹽緩沖液或pH7.2的PBS或pH7-8的Tris-HCl）成工作濃度，然后每孔加100 μl稀釋后的捕獲抗體，室溫或4℃過夜包被，然后進行洗板和封閉之后即可使用，如需長期保存，需要真空凍干后保存

問：ELISA實驗中的捕獲抗體和檢測抗體是同一個抗體么？

答：不是的，在雙抗夾心法ELISA實驗中，會同時用到捕獲抗體和檢測抗體，這兩個抗體是針對同一抗原蛋白的不同抗原位點的兩種抗體，這樣才可以同時結合抗原分子。

問： ELISA可以測DNA的表觀么？

答：不可以，ELISA是利用免疫學原理，定量檢測蛋白質表達的技術。測DNA表觀遺傳學，主要是檢測DNA甲基化，可以選用ChIP技術。