聚合酶鏈反應(yīng)(PCR)技術(shù)是在體外進(jìn)行的由引物介導(dǎo)的酶促DNA擴增反應(yīng)。PCR實驗過程中擴增產(chǎn)物常出現(xiàn)各種問題，以下列舉解決方案供參考：

一、擴增產(chǎn)物在凝膠中涂布或成片狀條帶彌散

（1）酶量過高。減少酶量；酶的質(zhì)量差，調(diào)換另一來源的酶。

（2）dNTP濃度過高。減少dNTP的濃度。

（3）MgCl2濃度過高。可適當(dāng)降低其用量。

（4）模板量過多。質(zhì)粒DNA的用量應(yīng)<50ng，而基因組DNA則應(yīng)<200ng。

（5）引物濃度不夠優(yōu)化。對引物進(jìn)行梯度稀釋重復(fù)PCR反應(yīng)。

（6）循環(huán)次數(shù)過多；增加模板量減少循環(huán)次數(shù)至30，縮短退火時間及延伸時間，或改用二種溫度的PCR循環(huán)。

（7）退火溫度過低。

（8）電泳體系有問題：

①凝膠中緩沖液和電泳緩沖液濃度相差太大；

②凝膠沒有凝固好；

③瓊脂糖質(zhì)量差。

（9）若為PCR試劑盒則可能：

①由于運輸儲存不當(dāng)引起試劑盒失效；

②試劑盒本身質(zhì)量有問題，如引物選擇、循環(huán)參數(shù)等選擇不當(dāng)。

（10）降解的陳舊模板擴增也易產(chǎn)生涂布。

二. 擴增產(chǎn)物出現(xiàn)多條帶（雜帶）

（1）引物用量偏大，引物的特異性不高。應(yīng)調(diào)換引物或降低引物的使用量。

（2）循環(huán)的次數(shù)過多。適當(dāng)增加模板的量，減少循環(huán)次數(shù)。

（3）酶的用量偏高或酶的質(zhì)量不好，應(yīng)降低酶量或調(diào)換另一來源的酶。

（4）退火溫度偏低，退火及延伸時間偏長。應(yīng)提高退火溫度，減少變性與延伸時間，也可采用二種溫度的PCR擴增。以2度為梯度設(shè)計梯度PCR反應(yīng)優(yōu)化退火溫度。

（5）樣品處理不當(dāng)。

（6）Mg2+濃度偏高，因適當(dāng)調(diào)整Mg2+使用濃度。

（7）若為PCR試劑盒，也可能時試劑盒本身質(zhì)量有問題。

（8）復(fù)制提前終止。使用非熱啟動的聚合酶時常有發(fā)生。冰上準(zhǔn)備反應(yīng)體系或采用熱啟動聚合酶。

（9）反應(yīng)緩沖液未全融化或未充分混勻。確保反應(yīng)緩沖液融化全并全混勻。

（10）引物特異性差。利用BLAST檢查引物特異性或重新設(shè)計引物。

（11）引物量過多。減少反應(yīng)體系中引物的用量。

（12）模板量過多。質(zhì)粒DNA的用量應(yīng)<50ng，而基因組DNA則應(yīng)<200ng。

（13）外源DNA污染。確保操作的潔凈。