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實時熒光定量PCR 引物二聚體相關(guān)問題解答
閱讀:84 發(fā)布時間:2024-8-5 聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng) (PCR) 是分子生物學(xué)領(lǐng)域功能強大的技術(shù)之一。實時熒光定量PCR 是在標(biāo)準(zhǔn) PCR 技術(shù)基礎(chǔ)上演變而成,常用于定量樣本中的 DNA 或RNA。
利用熒光探針或熒光 DNA 結(jié)合染料,采用實時熒光定量PCR 儀檢測熒光并完成 PCR 反應(yīng)所需的熱循環(huán),實現(xiàn)擴增產(chǎn)物的定量。利用序列特異性引物,可測定特定的 DNA 或 RNA 序列的拷貝數(shù)。通過檢測 PCR 循環(huán)的每個階段中擴增產(chǎn)物的量,實現(xiàn)定量。如果樣本中存在高豐度的特定序列 (DNA 或 RNA),則在早期循環(huán)中即可觀察到擴增;如果序列較少,則在晚期循環(huán)中方可觀察到擴增。
實時熒光定量 PCR 分析的部分實施需要經(jīng)過優(yōu)化以確保所有反應(yīng)參數(shù)均設(shè)置精確,從而獲得準(zhǔn)確的結(jié)果,常見引物二聚體相關(guān)問題分析如下:
1、引物二聚體形成的原因
引物二聚體的形成是在實時熒光定量 PCR 設(shè)計和驗證過程中最常見的問題之一,當(dāng)引物對之間的部分序列存在同源性時,可形成引物二聚體。如果在 PCR 反應(yīng)過程中引物退火形成二聚體,則 TaqDNA 聚合酶可延伸二聚體,形成長于原始引物的產(chǎn)物,它可導(dǎo)致循環(huán)過程中更易出現(xiàn)退火錯誤。根據(jù)長度的不同,引物也可能出現(xiàn)自身折疊,由此與模板形成沖突。反應(yīng)的復(fù)雜性 (尤其在多重反應(yīng)過程中) 可使上述不良影響發(fā)生的幾率增加。
2、如何確定是否存在引物二聚體?
凝膠電泳是顯示引物二聚體的一種合適的方法。如圖 1所示,引物二聚體在凝膠的底部形成擴散條帶,通常位100 bp 以下。在 PCR 過程中,二聚體的形成與模板的退火及延伸之間存在競爭作用。引物二聚體通常隨模板的減少而增加。單獨采用凝膠電泳分析進行驗證的缺點在于,其靈敏度低僅達(dá)到納克級,因此可能無法得出結(jié)果。凝膠電泳分析的優(yōu)勢是當(dāng)解離曲線 (熔解曲線) 數(shù)據(jù)同時可用時,產(chǎn)物的大小有助于對結(jié)果進行綜合解釋。
圖1
解離曲線,又稱熔解曲線,是利用雙鏈 DNA 結(jié)合染料獲得的標(biāo)準(zhǔn)反應(yīng)熱廊線。如果擴增具有好的特異性,則實時熒光定量 PCR 板上每個反應(yīng)孔的解離曲線將出現(xiàn)一個較窄的單峰。引物二聚體的熒光強度較低,呈較寬的“波形",顯示其在 70°C 左右熔解。出現(xiàn)此峰形和熔解溫度主要是由于引物二聚體的長度較小且不確定。若對解離曲線中是否存在引物二聚體有任何疑問,可將觀察的結(jié)果與 NTC(No Template Control,即無模板對照,是陰性對照)反應(yīng)孔相比較,當(dāng)模板不存在時,更易出現(xiàn)引物二聚體峰 (圖 2,熔解曲線中突出顯示了特異性擴增 (圖2A) 和引物二聚體效應(yīng)(圖2B)??衫?NTC 樣本在熔解曲線中產(chǎn)生多余的峰(圖2B) 識別出引物二聚體)。
3、如何減少或去除引物二聚體?
如果出現(xiàn)了引物二聚體,有許多方法可以減少或消除反應(yīng)中的引物二聚體。
(1) 首先是優(yōu)化熱循環(huán)條件,這主要是提高退火溫度。大多數(shù)情況下,兩步循環(huán) (由 95°C 變性步驟直接進入60°C 退火和延伸步驟) 有利于強效擴增,因此引物設(shè)計時設(shè)定的成功退火溫度為 60°C。
(2)可降低引物濃度,甚至采用不同的正向引物和反向引物的比值也有一定的幫助。大多數(shù)情況下,每條引物的理想最終濃度為 200 nM,但如有需要,可將濃度降至 60 nM。
(3)鎂的最佳濃度一般約為 3 mM。高于此濃度易形成引物二聚體。
(4)如果未對引物形成二聚體的傾向進行評估,則應(yīng)補充評估并考慮重新設(shè)計 (如有需要)。通常情況下,最好使用熱啟動 DNA 聚合酶,并在冰上進行反應(yīng)。
(5)在理論上,針對同一靶點應(yīng)同時檢測多個引物組。這實際上可以節(jié)省大量時間,因為如果這些引物中的一個能立即發(fā)揮作用,則可以減少花費在優(yōu)化過程上的時間。