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在之前的“轉染方法如何選"中，物、化、生三大類轉染方法的優(yōu)缺點已進行總結歸納，下面是復習時間：
電穿孔，即我們常說的“電轉"，是實驗室中除了病毒轉染、脂質體或PEI轉染外使用較為普遍的一種物理轉染方法。
對于電轉方法的使用，有人說它們能夠高效轉染難以轉染的細胞如神經元、免疫、原代細胞等，同時在現(xiàn)階段大熱的應用中，如基因編輯、CRISPR篩選，甚至于近年來新型崛起的合成生物學和AI制藥研發(fā)中，都常能看到電轉技術的應用。
而作為獲得今年生物技術領域四大的私募融資的實體瘤CAR-T明星公司Arsenal Biosciences，也是采用了非病毒載體的基因編輯CITE技術(CRISPR Integration of Transgenes by Electroporation)，即用電穿孔手段實現(xiàn)T細胞的轉基因CRISPR整合技術，使T細胞有選擇性地靶向腫瘤，從而使患者的免疫系統(tǒng)能夠在不破壞正常組織的情況下摧毀ccRCC細胞(clear-cell renal cell carcinoma)。
那么如何在實驗中提高電轉效率，想必是大家最關心的問題，那這八大注意事項一定能夠幫到你：
1準備好加了新鮮培養(yǎng)基的多孔板，并在實驗前于37°C下預平衡
2使用傳代次數(shù)少并具有推薦融合度或密度（對數(shù)生長期）的細胞
3針對于貼壁細胞，需限制胰蛋白酶暴露時間，仔細監(jiān)測細胞分離情況
4根據優(yōu)化方案進行細胞計數(shù)并使用適量細胞數(shù)；所用細胞過少可能導致細胞死亡率增加，所用細胞過多可能導致細胞電轉效率降低
5采用高質量DNA，使用內毒素去除試劑盒進行純化；請通過測定A260:A280比值檢查各質粒制備液的純度
6室溫下以離心速度80-100×g和方案規(guī)定的時間進行離心
7離心后加入Nucleofector™溶液，混勻溶液/細胞沉淀制備成單細胞懸液，避免對細胞沉淀進行額外操作或用移液器槍頭重復抽吸
8Nucleofection™核轉后，用核轉試劑盒內配的一次性移液管在電轉耗材中的細胞頂部加入約500μL預熱培養(yǎng)基
輕輕將一次性移液管吸頭置于電轉耗材底部，收集細胞
將細胞懸液輕輕接種至制備的多孔板中
請勿重復吹吸混合細胞
