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DNA病毒基因組提取試劑盒
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更新時(shí)間:2024-08-29 15:32:34

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DNA病毒基因組提取試劑盒適合于從血清、細(xì)胞上清、淋巴液中提取DNA病毒基因組,不適合于RNA病毒基因組的提取。使用本試劑盒提取的基因組DNA可用于各種常規(guī)操作,包括酶切、PCR、文庫(kù)構(gòu)建、Southern雜交等實(shí)驗(yàn)。

DNA病毒基因組提取試劑盒

產(chǎn)品貨號(hào):10268

產(chǎn)品規(guī)格:50T/100T

產(chǎn)品簡(jiǎn)介:

DNA病毒基因組提取試劑盒適合于從血清、細(xì)胞上清、淋巴液中提取DNA病毒基因組,不適合于RNA病毒基因組的提取。使用本試劑盒提取的基因組DNA可用于各種常規(guī)操作,包括酶切、PCR、文庫(kù)構(gòu)建、Southern雜交等實(shí)驗(yàn)。

產(chǎn)品組成:

試劑名稱(chēng)

50T

100T

蛋白酶K

1ml

1ml×2

溶液V

25ml

50ml

漂洗液

15ml

15ml×2

洗脫液

10ml

20ml

吸附柱

50個(gè)

100個(gè)

收集管

50個(gè)

100個(gè)

操作步驟(僅供參考)

使用前請(qǐng)先在漂洗液中加入無(wú)水乙醇,加入體積請(qǐng)參照瓶上的標(biāo)簽。所有離心步驟均為使用臺(tái)式離心機(jī)在室溫下離心。

1. 取病毒上清液0.5ml,12000rpm離心5min,盡量吸盡上清使用,棄去沉淀。

2. 向病毒上清中加入20ul的蛋白酶K10mg/ml),充分混勻,65℃消化10-20min,期間可顛倒離心管混勻數(shù)次。

3. 向管中加入500ul溶液V,充分混勻。再向管中加入400ul無(wú)水乙醇,充分混勻,此時(shí)可能會(huì)出現(xiàn)絮狀沉淀,不影響DNA的提取,可將溶液和絮狀沉淀都加入吸附柱中,靜置2min。(吸附柱的最大容積為750ul,可分兩次加入。一次吸附完離心后再將余下的混合液體加入柱中靜置離心。)

4. 12000rpm離心2min,棄廢液,將吸附柱放入收集管中。

5. 向吸附柱中加入600ul漂洗液(使用前請(qǐng)先檢查是否已加入無(wú)水乙醇),12000rpm離心1min,棄廢液,將吸附柱放入收集管中。

6. 向吸附柱中加入600ul漂洗液,12000rpm離心1min,棄廢液,將吸附柱放入收集管中。

7. 12000rpm離心2min,將吸附柱置于室溫或50℃溫箱放置數(shù)分鐘,目的是將吸附柱中殘余的漂洗液去除否則漂洗液中的乙醇會(huì)影響后續(xù)的實(shí)驗(yàn)如酶切、PCR等。

8. 將吸附柱放入一個(gè)干凈的離心管中,向吸附膜中央懸空滴加50ul-100ul經(jīng)65℃水浴預(yù)熱的洗脫液,室溫放置5min,12000rpm離心1min。

9. 離心所得洗脫液再加入吸附柱中,室溫放置2min,12000rpm離心2min,即可得到高質(zhì)量的病毒基因組DNA。

注意事項(xiàng):

1. 蛋白酶K需放置-20℃保存。

2. 樣品應(yīng)避免反復(fù)凍融,否則會(huì)導(dǎo)致提取的DNA片段較小且提取量也下降。

3. 若溶液V中有沉淀,可在37℃水浴中重新溶解再使用,不影響效果。

4. 洗脫緩沖液的體積最好不少50ul,體積過(guò)小會(huì)影響回收效率。洗脫液的pH值對(duì)洗脫效率也有影響,若需要用水做洗脫液應(yīng)保證其pH值在8.0左右(可用NaOH將水的pH值調(diào)至此范圍),pH值低于7.0會(huì)降低洗脫效率。 DNA產(chǎn)物應(yīng)保存在-20℃,以防DNA降解。

5. DNA濃度及純度檢測(cè):得到的基因組DNA片段的大小與病毒的保存條件和種類(lèi)等因素有關(guān)。D260值為1.0相當(dāng)于大約50ug/ml雙鏈DNA、40ug/ml單鏈DNAOD260/OD280比值應(yīng)為1.7-1.9,如果洗脫時(shí)不使用洗脫緩沖液,而使用去離子水,比值會(huì)偏低,因?yàn)?/span>pH值和離子存在會(huì)影響光吸收值,但并不表示純度低。

6. 如果病毒含量過(guò)低,最后提取的基因組DNA電泳可能無(wú)法檢測(cè)到,但 PCR等其他實(shí)驗(yàn)還會(huì)有結(jié)果。

有效期室溫(15℃-25℃) 干燥保存,復(fù)檢期12個(gè)月,2℃-8℃保存時(shí)間更長(zhǎng)。



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