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DNA病毒基因組提取試劑盒 核酸類
產(chǎn)品貨號:10268
產(chǎn)品規(guī)格:50T/100T
產(chǎn)品簡介:
DNA病毒基因組提取試劑盒 核酸類適合于從血清、細胞上清、淋巴液中提取DNA病毒基因組,不適合于RNA病毒基因組的提取。使用本試劑盒提取的基因組DNA可用于各種常規(guī)操作,包括酶切、PCR、文庫構建、Southern雜交等實驗。
產(chǎn)品組成:
試劑名稱 | 50T | 100T |
蛋白酶K | 1ml | 1ml×2 |
溶液V | 25ml | 50ml |
漂洗液 | 15ml | 15ml×2 |
洗脫液 | 10ml | 20ml |
吸附柱 | 50個 | 100個 |
收集管 | 50個 | 100個 |
操作步驟(僅供參考):
使用前請先在漂洗液中加入無水乙醇,加入體積請參照瓶上的標簽。所有離心步驟均為使用臺式離心機在室溫下離心。
1. 取病毒上清液0.5ml,12000rpm離心5min,盡量吸盡上清使用,棄去沉淀。
2. 向病毒上清中加入20ul的蛋白酶K(10mg/ml),充分混勻,65℃消化10-20min,期間可顛倒離心管混勻數(shù)次。
3. 向管中加入500ul溶液V,充分混勻。再向管中加入400ul無水乙醇,充分混勻,此時可能會出現(xiàn)絮狀沉淀,不影響DNA的提取,可將溶液和絮狀沉淀都加入吸附柱中,靜置2min。(吸附柱的最大容積為750ul,可分兩次加入。一次吸附完離心后再將余下的混合液體加入柱中靜置離心。)
4. 12000rpm離心2min,棄廢液,將吸附柱放入收集管中。
5. 向吸附柱中加入600ul漂洗液(使用前請先檢查是否已加入無水乙醇),12000rpm離心1min,棄廢液,將吸附柱放入收集管中。
6. 向吸附柱中加入600ul漂洗液,12000rpm離心1min,棄廢液,將吸附柱放入收集管中。
7. 12000rpm離心2min,將吸附柱置于室溫或50℃溫箱放置數(shù)分鐘,目的是將吸附柱中殘余的漂洗液去除,否則漂洗液中的乙醇會影響后續(xù)的實驗如酶切、PCR等。
8. 將吸附柱放入一個干凈的離心管中,向吸附膜中央懸空滴加50ul-100ul經(jīng)65℃水浴預熱的洗脫液,室溫放置5min,12000rpm離心1min。
9. 離心所得洗脫液再加入吸附柱中,室溫放置2min,12000rpm離心2min,即可得到高質(zhì)量的病毒基因組DNA。
注意事項:
1. 蛋白酶K需放置-20℃保存。
2. 樣品應避免反復凍融,否則會導致提取的DNA片段較小且提取量也下降。
3. 若溶液V中有沉淀,可在37℃水浴中重新溶解再使用,不影響效果。
4. 洗脫緩沖液的體積最好不少于50ul,體積過小會影響回收效率。洗脫液的pH值對洗脫效率也有影響,若需要用水做洗脫液應保證其pH值在8.0左右(可用NaOH將水的pH值調(diào)至此范圍),pH值低于7.0會降低洗脫效率。 DNA產(chǎn)物應保存在-20℃,以防DNA降解。
5. DNA濃度及純度檢測:得到的基因組DNA片段的大小與病毒的保存條件和種類等因素有關。D260值為1.0相當于大約50ug/ml雙鏈DNA、40ug/ml單鏈DNA。OD260/OD280比值應為1.7-1.9,如果洗脫時不使用洗脫緩沖液,而使用去離子水,比值會偏低,因為pH值和離子存在會影響光吸收值,但并不表示純度低。
6. 如果病毒含量過低,最后提取的基因組DNA電泳可能無法檢測到,但 PCR等其他實驗還會有結果。
有效期:室溫(15℃-25℃) 干燥保存,復檢期12個月,2℃-8℃保存時間更長。
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