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葉綠體分離的操作方法

時(shí)間:2021/11/17閱讀:3061
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材料與儀器

葉子組織
PBF-Percoll 溶液 山梨醇 BSA HEPES-KOH EDTA
聚碳酸酯離心管

步驟

1. 制備 Percoll 梯度

(1) 兩個(gè) 50 ml 的聚碳酸酯離心管中分別加入 25 ml 50% 的 PBF-Percoll 溶液。

50% PBF-Percoll

0.33 mol/L 山梨醇

50 mmol/L HEPES-KOH,pH 8.0

2 mmol/L EDTA

1 mmol/L MgCl2

1 mmol/L MnCI2

50% Percoll (v/v)

3% PEG 6000 (w/v)

1% BSA ( 無(wú)脂肪酸,比如 Sigma 的 A7030)

1% Ficoll (w/v)   

(2) 29000 g(15600 r/min,SS34 轉(zhuǎn)頭;Sorvall)離心 15 分鐘形成 Pencoll 梯度。

形成的梯度可放 4℃ 過(guò)夜。

2. 組織勻漿

(1) 用剪刀收獲葉子組織(照上述方法培養(yǎng),一個(gè)平盤(pán)可得到大約 100 g 的葉組織),切成碎片,移至 1 L 的塑料燒杯中。

(2) 加入冰冷的研磨懸浮緩沖液。在 4℃ 房間內(nèi),用 Polytron 勻漿器(帶有 PTA-36/2 mol/L 發(fā)生器的 PTA 10/35 型)研磨葉子,每?jī)傻饺齻€(gè) 5 秒脈沖為一循環(huán),進(jìn)行 6~7 次循環(huán)。

研磨懸?。℅R)緩沖液:

2 mmol/L EDTA 鈉鹽,pH 8.0

1 mmol/L MgCl2

1 mmol/L MnCl2

50 mmol/L HEPES-KOH,pH 8.0

0.33 mol/L 山梨醇

0.5 g/L BSA ( 無(wú)脂肪酸)

5 mmol/L 抗壞血酸鈉鹽(用前添加)

(3) 用兩層米拉布(Calbiochem ) 過(guò)濾勻漿。將濾液倒入兩個(gè) 250 ml 的離心瓶中。

3. 2600 g(Sorvall GSA 轉(zhuǎn)頭 4000 r/min)離心勻漿 5 分鐘。

4. 小心傾去上清。加入 2 ml GR 緩沖液。用一小駝毛刷輕輕的將瓶子內(nèi)壁的葉綠體刷松。置回轉(zhuǎn)振蕩器的冰上振動(dòng) 5~10 分鐘使團(tuán)塊散開(kāi)。

5. 將重懸浮的葉綠體加到 Percoll 梯度上。10500 g(Sorvall HB-4 轉(zhuǎn)頭的 8000 r/min)離心 10 分鐘。

6. 抽出梯度介質(zhì)直到底部的條帶。將每一管中葉綠體移至一 50 ml 離心管中,用 1x SH 稀釋至 40 ml。2400 g 離心 2 分鐘(SS34 轉(zhuǎn)頭,4500 r/min)。

7. 用駝毛刷在少量 1x SH 中重懸浮沉淀。將所有葉綠體倒入一個(gè)離心管中,稀釋至 40 ml,2400 g 離心 2 分鐘。

8. 在 1~2 ml 1 x SH 中重懸浮沉淀。

9. 檢測(cè)葉綠素確定葉綠體得率。

(1) 將 5 μl 葉綠體懸液與 995 μl 80% 丙酮在一微量離心管中混勻。

(2) 13000 g 離心 2 分鐘。

(3) 檢測(cè) 663 nm 和 645 nm 處的光吸收值。

(4) 葉綠素的量(mg/ml) = (8.02 A663 +  20.2 A645)/5

10. 葉綠體在液氮中的長(zhǎng)期保存。

(1) 分離好葉綠體后,立刻用含 20% DMSO 的 1x SH 將最后的沉淀重懸至葉綠素濃度為 3~5 mg/ml。

(2) 冰上放置 10 分鐘。

(3) 每 1 ml 為一份,用移液管吸至微量離心管中,快速冷凍,置液氮中保存。

11. 凍存的完整葉綠體的復(fù)蘇。

(1) 室溫融化凍存的葉綠體。用 1x SH 稀釋至葉綠素濃度為 1 mg/ml。

(2) 吸取 1~2 ml 含 35% Percoll 的 1x SH 緩沖液到一個(gè) 15 ml 的離心管中。其上加入融化的葉綠體。13000 g(Sorvall HB-4 轉(zhuǎn)頭,10000 r/min)離心 3 分鐘。棄去上清,用 1x SH 洗沉淀。


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