脂質(zhì)體介導(dǎo)的瞬時轉(zhuǎn)染

步驟

表達載體與 DNA 制備：

pSVTKGH，線性化 [ Selden et al.，1986]

此載體含有 SV 40 增強子及單純皰疹病毒胸苷激酶啟動子序列，兩者可啟動人類生 K 激素（hGH ) 基因表達。hGH 可直接分泌到組織培養(yǎng)基上，可通過放射免疫學(xué)分析法直接檢測 [ Ravid et al.，1991 ]。

pcDNA3，線性化（Invitrogen )

該表達載體在多克隆位點上游含有人類巨細胞病毒增強子-啟動子，下游含多聚腺苷酸信號及牛生長激素（bGH ) 基因的轉(zhuǎn)錄終止序列。pcDNA3 載體還含有新霉素抗藥基因，用作篩選穩(wěn)定表達目的基因的抗性克隆。如本章方法中所述，pcDNA3 也可用作與報告基因載體共轉(zhuǎn)染的篩選標(biāo)記。

1. 以 5X105個/ml 的濃度在 75 cm2 培養(yǎng)瓶中接種 L8057-Y10 細胞（F12/FB 培養(yǎng)基）（含谷氨酰胺（2 mmol/L )，青霉素（50 U/ml ) 及鏈霉素（5 μg/ml ) 的 Ham’s F12 , 添加 10% FBS (熱滅活；GIBCO #16140-014)），并于 37°C，5% CO2 孵箱培養(yǎng)細胞。

2. 在對數(shù)生長后期，收集細胞，4°C ，380 g 離心 5 min。

3. 用 10ml D-PBSA 洗滌細胞沉淀，4°C，380 g 離心 5 min。

4. 用 5 ml 電穿孔緩沖液洗滌細胞沉淀，用血細胞計數(shù)儀計數(shù)細胞。

5. 4°C，380 g 再次離心 5 min，收集細胞。

6. 用電穿孔緩沖液將細胞制成密度為 1X106 個/0.8 ml 的細胞懸液。

7. 將 0.8 ml 的細胞移至預(yù)冷的電穿孔杯中。

8. 分別加入 50 μg 和 5 μg 線性 pSVTKGH 及線性 pcDNA3 （如果實驗?zāi)康氖菣z測特異基因啟動子-報告基因表達，還需另設(shè)無質(zhì)粒 DNA 的電穿孔細胞，作為陰性對照）

9. 一只手緊握電穿孔杯，另一只手輕彈底部，以混勻 DNA-細胞懸液，將懸液于冰上孵育 10 min。

10. 在 400V /500 μF 條件下轟擊細胞懸液，并記錄時間。

11. 之后，取出電穿孔杯，在冰上擱置 10 min。

12. 將轟擊后的細胞移至盛有 10 ml F12/FB 的離心管中，另取少許培養(yǎng)基沖洗電穿孔杯，移回到離心管，離心，收集細胞。

13. 將細胞于 20 m l F12/FB 中再次懸浮，種到 75 cm2 培養(yǎng)瓶中，于37°C ，5 %CO2 培養(yǎng)箱中孵育，令新霉素抗性基因表達。

14. 24~48 h 后，離心收集細胞，然后用 20 ml 選擇性培養(yǎng)基中再次懸浮細胞。

15. 隨后，需每 2~4 天換液（選擇性培養(yǎng)基），以清除死亡細胞的碎片，并且使抗性細胞生長，篩選過程至少需要兩周。

16. 測定 hGH 在細胞上清液的表達（見 27. 11.5 節(jié)）。