選擇性凋亡DNA Ladder抽提試劑盒 核酸提取 返回列表頁

選擇性凋亡DNA Ladder抽提試劑盒 核酸提取

選擇性凋亡DNA Ladder抽提試劑盒

目錄號：40117

試劑盒組成、儲存、穩(wěn)定性：

注意事項：

為保持活性方便運輸，Enzyme B客戶收到時為凍干粉，收到后加500µl滅菌水（25次）或者1ml滅菌水（50次）溶解后－20oC保存。EnzymeA和Enzyme B為酶溶液，應該避免反復凍融降低活性，如果要分多次使用，最好按照每次使用量分裝后－20oC保存。

具體產(chǎn)品的參數(shù)以收到產(chǎn)品說明書的參數(shù)為準

產(chǎn)品介紹：

凋亡(apoptosis)或程序性死亡的細胞一個形態(tài)學的顯著特點是染色體DNA以核小體為單位（185 bp）規(guī)律斷裂形成長度約為n×185bp (n=1,2,3,4…)的DNA片段，經(jīng)瓊脂糖凝膠電泳顯示為階梯狀凋亡DNA Ladder，是凋亡細胞最直觀的特征。本試劑盒選擇性從組織和細胞中分離提取凋亡DNAladder，通過選擇性分離基因組DNA與凋亡DNAladder，最大限度的減少了基因組DNA對凋亡DNA ladder的觀察干擾，因此顯著的提高了檢測敏感度，反應可在微量離心管進行，2.5小時完成，快速方便；無需有機抽提，檢測靈敏度極gao，可從約2000個凋亡細胞中檢測到DNAladder。推薦起始細胞量為5～10×10⁵個，但投入的細胞量可在1×10⁵~ 5×10⁶之間變化。原則是總細胞中應含有至少約1～2×10⁴個凋亡細胞。多于2×10⁴個凋亡細胞通?？色@得十分清晰的凋亡DNAladder。本試劑盒也可用于從組織中提取凋亡DNAladder。但與培養(yǎng)細胞相比，整體動物組織凋亡細胞出現(xiàn)的時間、部位、程度等規(guī)律性差往往造成難以準確取材，可能顯著影響實驗結果。但只要組織確實發(fā)生凋亡，有經(jīng)驗的用戶也可以使用本試劑盒從組織提取凋亡DNAladder(參見說明4)。

產(chǎn)品說明:

1. 溴化乙錠染色過度將降低DNA條帶檢測靈敏度，可用水沖洗凝膠10～30分鐘。如沖洗過頭可再用溴化乙錠復染?？捎酶`敏的DNA染色劑SYBR Green。也可進行丙烯酰胺DNA凝膠電泳和DNA銀染。

2.對細胞進行干預處理后，凋亡可能僅在某一時間點或某一干預強度下最為明顯。需要進行預試驗確定最佳干預時間或強度。此時也可用凋亡小體/hoeschst染色試劑盒(DN1801)快速染色凋亡小體觀察。

3.推薦起始細胞量為5～10×10⁵個，但投入的細胞量可在1×10⁵~ 5×10⁶之間變化。原則是總細胞中應含有至少約1～2×10⁴個凋亡細胞。多于2×10⁴個凋亡細胞通?？色@得十分清晰的凋亡DNAladder。六孔板的一個孔相當于一個35 mm培養(yǎng)皿長滿后可得到1～10×10⁵個細胞，如果細胞凋亡發(fā)生率為10%，經(jīng)過處理可得到約1～10×10⁴個凋亡細胞，應該足以獲得清晰的凋亡DNA ladder。反之如果不能從>3×10⁶個細胞獲得清晰的凋亡DNAladder，表明其中凋亡細胞少于1%。此時增加細胞用量也難已奏效。

4. 從組織塊提取凋亡DNAladder。取10～20 mg組織塊放入小玻璃勻漿器，加100～200μlExtraction buffer，上下手動勻漿15～20次。取出勻漿液，冰上5～10 min。振蕩10秒。4500 rpm 10分鐘收集上清液并轉移到新1.5ml離心管，執(zhí)行提取步驟3。另外一種方法是將30～50mg組織jian碎后在PBS里面勻漿，制成細胞懸液，離心收集細胞后接步驟2繼續(xù)執(zhí)行提取。

5. 采用高質量瓊脂糖，使用寬度較小和厚度較窄的樣品梳子，制作較薄的瓊脂糖凝膠(厚度約2～4 mm)；用較低的電壓進行慢速電泳，將顯著增加凋亡DNA條帶檢測靈敏度。電泳距離不要太長，否則將使小的凋亡DNA條帶彌散而降低分辨率。

操作步驟：

1.用PBS漂洗細胞兩遍后微型離心機500×g4oC5min收集5～10×10⁵個細胞（最好同時做一個未凋亡細胞的對照）。小心用移液槍吸棄上清，除盡管壁附著液體。

2. 將離心管底部的細胞沉淀用手指輕輕彈松打散后，加入100µl的Extraction buffer，用振蕩器激烈混合10秒鐘后，1,100～1,600 xg(約3500～4500rpm)離心5分鐘。

3. 勿觸動管底沉淀，將上清液轉移到新的1.5ml離心管。

4. 沉淀按操作2.方法再重復一次。

5.把上清液與操作3.的上清液合并于一起共約200µl，作為粗提取液(含有凋亡DNA片段，未凋亡染色體DNA已經(jīng)通過沉淀去除)。

6.向粗提取液中加入10% SDS溶液20µl后，再加入Enzyme A 20µl，混勻，56℃溫育1小時。

7.向上述混合液中加入Enzyme B 20µl，混勻,37℃溫育1小時，或者直到變得透亮（可過夜）。

8. 向上述混合液中加入Precipitant 130µl后，顛倒混勻，再加入1 ml的乙醇，混勻后- 20℃放置1小時以上（沉淀凋亡DNA片段）。

9. 至少13000rpm 4oC離心15min，棄上清，加1ml70％乙醇漂洗一遍后離心，倒去乙醇，并且盡量吸除管壁附著液體。敞開管口，室溫晾干沉淀。

10. 用17µl雙蒸水或TEBuffer充分溶解沉淀，加3µl6xDNA凝膠上樣緩沖液震蕩混勻。取全部20µl上樣或者適量上樣進行1%agarose gels電泳。溴化乙錠染色，紫外觀察照相（凋亡發(fā)生率較低時，添加過量TE Buffer溶解沉淀有可能會導致濃度太稀，無法檢出DNA Ladder，因此可減少用量，反之可增加）。

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