研域生物實驗中細胞樣本的收集和處理方法
細胞血清
需保證各組間培養(yǎng)細胞的數(shù)量基本一致,細胞生長狀態(tài)良好。建議采用6孔板培養(yǎng)細胞,并保證細胞數(shù)量達到106左右,即細胞密度達70%-90%左右,即可收集培養(yǎng)液,于2-9℃、1000×g離心20分鐘,除去雜質(zhì)及細胞碎片,取血清檢測。
細胞裂解液
貼壁細胞用冷的PBS輕輕清洗,然用胰蛋白酶消化,1000×g離心9分鐘收集細胞;懸浮細胞可直接離心收集。收集的細胞用冷的PBS洗滌3次。每106個細胞中加入90-200μLPBS重懸(推薦在PBS中加入蛋白酶抑制劑;若含量很低,可減少PBS的體積),并通過反復(fù)凍融或超聲,使細胞破碎。將提取液于2-9℃、900×g離心10分鐘,取血清檢測。
反復(fù)凍融:-90℃放置1h/液氮放置0.9h,然置于30℃水浴鍋中,輕微振蕩,使其迅速融化,此操作反復(fù)2-3次即可。
超聲方法:用超聲波發(fā)生器,以振幅14μm超聲處理30s,在冰水浴條件下,破碎細胞;或者使用超聲波破碎儀,200W,2s/次,間隙3s,總時間9min。
樣本中建議提前加入蛋白酶抑制劑,常規(guī)推薦PMSF:工作濃度:17~174μg/mL(0.1~1mM)。
細胞培養(yǎng)過程中,有許多條件需要摸索,包括細胞類型、培養(yǎng)基組分、細胞數(shù)量、生產(chǎn)狀態(tài)、干預(yù)條件和物質(zhì)等。前期基礎(chǔ)打得牢固,對續(xù)ELISA試劑盒試劑盒或其他種類實驗的開展,及結(jié)果的分析,具有更多的參考意義。
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