TNFSF12/TWEAK調節(jié)結腸炎性成纖維細胞分化促進成纖維細胞-單核細胞相互作用
The TNFSF12/TWEAK Modulates Colonic Inflammatory Fibroblast Differentiation and Promotes Fibroblast-Monocyte Interactions
KWS:TNFSF12/TWEAK;Colonic Inflammatory Fibroblast;Differentiation;Monocyte;Cell Coculture
炎癥性腸?。↖BD)是潰瘍性結腸炎(UC)和克羅恩?。–D)兩種病癥的總稱,在不同的疾病階段和致病性情況下均發(fā)現(xiàn)了炎癥成纖維細胞。成纖維細胞特征和功能的改變成為 IBD 的關鍵影響因素,驅動致病性成纖維細胞功能的介質可能是治療干預的希望靶點。
驅動成纖維細胞-免疫細胞通訊的介質和分子機制才剛開始被闡明。TNF 超家族(TNFSF)成員14(TNFSF14),也稱為 LIGHT,被鑒定為一種成纖維細胞衍生因子,會抑制腸道類器官的生長。重要的是,TNFSF 的各種因子,包括TNFSF14、TNFSF12(也稱為 TNF 相關的凋亡弱誘導劑TWEAK)或 TNFSF15 ,最近在臨床前模型中確認與 IBD 和纖維化有關。
基于此,愛爾蘭都柏林大學學院Conway生物分子與生物醫(yī)學研究所的聯(lián)合團隊在一項研究中,集中探討了 TWEAK 作為結腸成纖維細胞分化介質的潛力,并分析了其在成纖維細胞-單核細胞相互作用中的參與。研究發(fā)現(xiàn)TWEAK 具有作為轉錄抑制因子和誘導因子的雙重作用,導致成纖維細胞分化為炎癥細胞,并利用共培養(yǎng)模型探索了炎性成纖維細胞調節(jié)免疫細胞反應的潛力,發(fā)現(xiàn)暴露于 TWEAK 處理的人結腸成纖維細胞的 THP-1 單核細胞粘附并增加炎癥標志物的表達。這些數(shù)據(jù)表明了 TWEAK 促進結腸炎性成纖維細胞分化和成纖維細胞-單核細胞相互作用。研究成果發(fā)表于 The Journal of Immunology 期刊題為“The TNFSF12/TWEAK Modulates Colonic Inflammatory Fibroblast Differentiation and Promotes Fibroblast-Monocyte Interactions”。
首先,為了測試 TWEAK 在結腸成纖維細胞分化中的作用,將原代人結腸成纖維細胞用 TWEAK 處理評估轉錄譜的變化。差異表達基因揭示了超過1200 基因的失調,而 TWEAK 作為基因誘導因子和抑制因子的作用相似,有 692 個誘導基因和 579 個抑制基因,其中上調的轉錄組由與炎癥相關的基因填充(圖1 A)。
值得注意的是,與抗原(Ag)呈遞相關的幾個過程,如 TAP1 結合和 MHC 蛋白結合,也在 TWEAK 上調數(shù)據(jù)集中富集,還上調了許多參與 Ag 加工和呈遞以及對感染因子反應的基因(圖1 B、D)。同時,TWEAK 促進了細胞因子(包括 IL-1B、IL-6、IL-12A、IL-15 或 IL-33)、趨化因子、免疫受體、TNFSF 介質/受體/接頭、細胞粘附分子的基因表達(圖1 C)。TWEAK 還誘導了基質重塑介質和炎性成纖維細胞標志物的表達,降低血小板衍生生長因子受體α(PDGFRα)的表達(圖1 E)。這些數(shù)據(jù)表明,TWEAK 介導結腸成纖維細胞分化為不同的致病特征,促進參與炎癥和 Ag 呈遞的基因的表達,增加參與基質重塑的基因,并可能使參與上皮穩(wěn)態(tài)的基因失調。
以往研究將結腸基質細胞分為四類,其中基質4(S4)亞群被確定為炎癥群體,該亞群在正常結腸標本中幾乎不存在,而在 UC 活檢中增加。鑒于結腸成纖維細胞中 TWEAK 誘導的轉錄組的炎癥性質,研究人員假設這類似于先前在 UC 中鑒定的 S4 亞群。為此,展開了一項比對研究,將 TWEAK 上調和下調的轉錄組與這四個基質群體中的每一個進行比較,發(fā)現(xiàn)TWEAK 誘導的反應與 S4 的同源性最高。與先前在 IBD 患者活檢中報道的 TWEAK 受體(TNFRSF12/Fn14)的高表達一致,對 Fn14 在細胞群中的表達分析表明,該基因在 S4 細胞中dute存在,而 TWEAK 本身不被任何基質群表達。因此,TWEAK 在結腸成纖維細胞中誘導炎癥轉錄程序,該程序與 UC 中的炎性成纖維細胞亞群部分一致。
圖1 TWEAK誘導結腸成纖維細胞的炎癥譜。
鑒于 TWEAK 介導的 ICAM-1 和 VCAM-1 上調,以及 CCL2 的高分泌,實驗假設 TWEAK 誘導的炎性成纖維細胞促進單核細胞募集或激活。
接下來,為了研究它們的相互作用,將原代結腸成纖維細胞與THP-1細胞共培養(yǎng),單培養(yǎng)的THP-1細胞(vehicle- 或TWEAK-)作為對照。與成纖維細胞共培養(yǎng)導致大量 THP-1 細胞粘附,從而形成兩個細胞組分,以下稱為懸浮和粘附組分(圖2 A)。有趣的是,與成纖維細胞共培養(yǎng)上調懸浮 THP-1 細胞中粘附分子 CD11b的表達,表明該細胞組分也由與成纖維細胞共培養(yǎng)引發(fā),盡管這僅通過用 TWEAK 預處理而略微增加(圖2 B、C)。相反,THP-1 細胞的活力不受 TWEAK 的影響,且在單培養(yǎng)和共培養(yǎng)之間沒有差異。
然后繼續(xù)分析了 TWEAK 誘導的成纖維細胞對極化募集的單核細胞/巨噬細胞的可能性。CD14 是一種在單核細胞和巨噬細胞中發(fā)現(xiàn)的標志物,在單培養(yǎng)懸浮的 THP-1 細胞中表達極少,相反,在共培養(yǎng)物的懸浮 THP-1 中 CD14high 細胞顯著增加,這在與 TWEAK 處理的成纖維細胞的共培養(yǎng)物中進一步富集(圖2 D、E)。有趣的是,CD14 表達也在暴露于 TWEAK 處理的結腸成纖維細胞條件培養(yǎng)基的 THP-1 細胞中被誘導,但程度低于直接共培養(yǎng)(圖2 E)。此外,與 TWEAK 處理的成纖維細胞共培養(yǎng)的細胞中,ICAM-1high THP-1 的頻率更高(圖2 F、G),熱圖分析還顯示ICAM-1high 和 CD14high THP-1 之間存在相關性(圖2 F)。
進一步分析 THP-1 的貼壁部分,使用 CCR2 (在 THP-1 上高表達,在結腸成纖維細胞上缺失)和 CD90 (成纖維細胞標志物,在THP-1 上缺失)來區(qū)分粘附共培養(yǎng)中的兩個細胞組分(圖2 H)。實驗觀察到,與具有 CCD-18Co(圖2 H、I)和 PB-H-6231的正常結腸成纖維細胞相比,TWEAK 處理的成纖維細胞共培養(yǎng)中粘附 CCR2high CD90- 細胞(原始巨噬細胞)數(shù)量顯著增加,表明 TWEAK 刺激促進了成纖維細胞募集和粘附單核細胞的能力。有趣的是,與懸浮部分中的 THP-1 一樣,粘附的 CCR2high CD90- 細胞的 CD14 水平明顯更高(圖2 J、K)。同樣,盡管 TWEAK 在 THP-1 或成纖維細胞單培養(yǎng)物中未能上調 CXCL1 或 IL-8 的分泌,但與未處理的成纖維細胞共培養(yǎng)相比,THP-1/TWEAK 誘導的成纖維細胞共培養(yǎng)物中兩種趨化因子均顯著增加(圖2 L)。這些數(shù)據(jù)表明,THP-1 細胞與結腸成纖維細胞共培養(yǎng)可促進其粘附、活化和趨化因子分泌,當用 TWEAK 預刺激成纖維細胞時,這種效應會增強。
圖2 TWEAK 誘導的成纖維細胞募集并極化 THP-1 細胞。
發(fā)現(xiàn) TWEAK 處理的結腸成纖維細胞促進 THP-1 粘附和分化后,又研究了原代單核細胞是否會表現(xiàn)出類似的反應,使用上述共培養(yǎng)模型,將原代單核細胞與結腸成纖維細胞進行單培養(yǎng)或共培養(yǎng)。與 THP-1 相反,觀察到大多數(shù)單核細胞粘附在培養(yǎng)物中,無論是否存在成纖維細胞。培養(yǎng) 24 小時后,單培養(yǎng)單核細胞中 CCR2 的表達明顯高于共培養(yǎng),而在與 TWEAK處理的成纖維細胞共培養(yǎng)中CCR2 的表達zuidi,這可能代表一種單核細胞-巨噬細胞中介。
中度和高度表達 CD16 的單核細胞的頻率比較顯示,與單獨的單核細胞相比,TWEAK 刺激的成纖維細胞共培養(yǎng)的原代單核細胞從 CD16high 相對轉變?yōu)?CD16int(表示為 CD16int/CD16high 的比率)。此外,與正常成纖維細胞相比,TWEAK 處理的成纖維細胞共培養(yǎng)中 TREM-1high (結腸炎模型和 CD 患者中致病性巨噬細胞的標志物)單核細胞的頻率顯著增加。這些數(shù)據(jù)表明,TWEAK 處理的成纖維細胞促進原代單核細胞分化和活化,表現(xiàn)為CCR2 和 CD16 表達的降低、TREM-1 表達的增加以及 CXCL1 和 CXCL10 趨化因子分泌的增加。
最后,研究人員對 TWEAK/S4 共同轉錄組進行了額外的String分析,重點關注信號傳導介質、細胞因子和趨化因子(圖3 A)。信號介質包括非經典 NF-κB RELB 和 NFKB2 的兩個主要效應子,發(fā)現(xiàn) TWEAK 在蛋白質水平上誘導非經典 NF-κB 前體 p100 裂解成 p52,從 4 小時開始,在 24-48 小時之間達到峰值(圖3 B)。
鑒于上述發(fā)現(xiàn),測試了非經典 NF-κB 信號的選擇性抑制是否可以消除 TWEAK 誘導的結腸成纖維細胞的炎癥分化。實驗發(fā)現(xiàn),用 NIK 抑制劑 SMI1 處理阻斷了 TWEAK 介導的 VCAM-1 表達上調(圖3 C)和 CCL2 分泌(圖3 D),但它不影響 ICAM-1(圖3 C),這表明對 TWEAK 的反應可能由多種信號通路協(xié)調。
此外,研究人員假設,抑制 TWEAK 介導的非經典 NF-κB 信號可以調節(jié)結腸成纖維細胞和單核細胞之間的相互作用,阻斷后者的炎癥極化。結果發(fā)現(xiàn),當用 NIK SMI1 處理成纖維細胞時,CD14high THP-1 細胞群在與 TWEAK 誘導的成纖維細胞共培養(yǎng)中減少(圖3 E、F),與正常結腸成纖維細胞共培養(yǎng)中的水平相似,表明NIK 抑制劑至少部分損害了 TWEAK 誘導的成纖維細胞極化 THP-1 細胞的能力。這些數(shù)據(jù)表明,TWEAK通過非典型NF-κB介導結腸成纖維細胞炎癥分化和單核細胞極化。
圖3 非經典 NF-κB 調節(jié) TWEAK 引發(fā)的成纖維細胞和單核細胞之間的相互作用。
圖4 圖形概要
TNFSF12/TWEAK 誘導結腸成纖維細胞的炎癥特征。TWEAK 處理的成纖維細胞促進單核細胞粘附和炎性極化。抑制非經典 NF-κB 通路部分阻斷了這種相互作用。
綜上所述,該研究提供的數(shù)據(jù)揭示了 TWEAK 作為結腸成纖維細胞炎癥分化介質的重要作用,誘導與先前在 UC 患者中發(fā)現(xiàn)的炎癥成纖維細胞一致的轉錄程序。通過細胞系、原代單核細胞和共培養(yǎng)模型,研究發(fā)現(xiàn) TWEAK 刺激的結腸成纖維細胞促進單核細胞的粘附和分化,改變關鍵炎癥標志物如 CD14、CD16 或 TREM-1 的表達,并增強炎癥趨化因子的分泌。這項研究將 TWEAK/Fn14 軸定位為腸道炎癥中成纖維細胞-單核細胞相互作用的新興調節(jié)因子,以及調節(jié) IBD 中致病性成纖維細胞功能的有吸引力的治療靶點。
參考文獻:Matellan C, Kennedy C, Santiago-Vela MI, Hochegger J, Ní Chathail MB, Wu A, Shannon C, Roche HM, Aceves SS, Godson C, Manresa MC. The TNFSF12/TWEAK Modulates Colonic Inflammatory Fibroblast Differentiation and Promotes Fibroblast-Monocyte Interactions. J Immunol. 2024 Jun 15;212(12):1958-1970. doi: 10.4049/jimmunol.2300762. PMID: 38700420; PMCID: PMC11149899.
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