禽腺病毒I群（FADV-I）PCR試劑盒常見問題及解決方案

禽腺病毒I群（FADV-I）PCR試劑盒常見問題及解決方案

一、檢測結果異常

1.無目標擴增或擴增效率低

●可能原因：

●核酸提取失敗（如樣本反復凍融超過5次導致DNA降解）  。

●試劑活性下降（未按-20℃保存或反復凍融超過5次）。

●PCR循環(huán)參數(shù)設置錯誤（如退火溫度未設為60℃）。

●解決方案：

●優(yōu)化核酸提取步驟，推薦磁珠法或離心柱法，確保DNA純度。

●檢查試劑保存條件，避免不同批次試劑混用。

●核對儀器參數(shù)設置，確認擴增程序為“95℃預變性5分鐘，95℃ 15秒/60℃ 30秒，循環(huán)40次”。

2.非特異性擴增（假陽性）

●可能原因：

●樣本間交叉污染（如未使用濾芯吸頭或未區(qū)分實驗區(qū)域）。

●環(huán)境氣溶膠污染（實驗臺未徹-底消毒）。

●解決方案：

●使用無菌操作技術，嚴格劃分樣本處理區(qū)、試劑配制區(qū)和擴增區(qū)。

●實驗后用10%次氯酸或75%酒精消毒操作臺，廢液按生物危害物處理。

二、操作流程問題

1.樣本處理問題

●常見問題：

●活禽泄殖腔拭子未置于50%甘油生理鹽水中保存，導致核酸降解 。

●組織樣本未低溫運輸（推薦2-8℃冰袋保存），影響檢測準確性。

●解決方案：

●嚴格按規(guī)范保存樣本，活禽拭子需浸泡于50%甘油生理鹽水，組織樣本-20℃冷凍。

2.試劑配制誤差

●常見問題：

●預混液未完-全溶解或混勻，導致反應體系不均 。

●加樣體積偏差（如未按21μL預混液+4μL樣本比例配制。

●解決方案：

●使用前充分溶解試劑并短暫離心，避免氣泡干擾 。

●采用精準移液器（如低吸附吸頭）控制加樣量。

三、儀器與數(shù)據分析問題

1.擴增曲線異常

●可能原因：

●反應管密封不嚴導致蒸發(fā)（曲線呈鋸齒狀或不規(guī)則）。

●探針熒光衰減（未避光保存試劑或反復凍融） 。

●解決方案：

●檢查PCR管密封性，確保擴增過程無液體損失。

●試劑避光保存，開封后盡快使用。

2.結果判讀爭議

●常見問題：

●閾值線設置不當（需高于陰性對照熒光信號）。

●可疑樣本（Ct值35.0-38.0）未復測直接判讀。

●解決方案：

●調整基線參數(shù)（Start值3-15，Stop值5-20），手動設定閾值線。

●對可疑樣本重復檢測，若復測Ct值仍≤38.0則判為陽性。

四、質控標準與驗證

●質控失敗處理：

●陽性對照無擴增：檢查試劑活性或儀器校準（如FAM通道是否開啟）。

●陰性對照出現(xiàn)Ct值：排查環(huán)境污染或試劑污染，重新提取核酸。

五、其他注意事項

●試劑盒適用范圍：僅限科研使用，臨床診斷需結合其他檢測方法。

●冷鏈運輸要求：試劑需-20℃保存，運輸時使用冰袋（2-8℃）。

建議：若問題持續(xù)存在，可聯(lián)系供應商獲取技術支持。