211035--Qiagen QuantiTect Virus +ROX Vial Kit

SYBR Green I 熒光染料：SYBR Green I 能夠與雙鏈 DNA 結(jié)合，在游離狀態(tài)下，SYBR Green I 幾乎沒有熒光信號；當(dāng)它與雙鏈 DNA 結(jié)合后，熒光信號會顯著增強。隨著 PCR 反應(yīng)中雙鏈 DNA 的不斷合成，與 SYBR Green I 結(jié)合的量也逐漸增加，熒光信號強度與 PCR 產(chǎn)物的數(shù)量呈正相關(guān)，通過實時監(jiān)測熒光信號強度，即可反映出目標(biāo)核酸的擴增情況，從而實現(xiàn)對病毒核酸的定量分析。

TaqMan 探針：TaqMan 探針是一段與目標(biāo)核酸序列互補的寡核苷酸，其 5' 端標(biāo)記有報告熒光基團，3' 端標(biāo)記有淬滅熒光基團。在 PCR 反應(yīng)過程中，當(dāng)引物延伸至探針結(jié)合位點時，Taq 酶的 5' - 3' 外切酶活性會將探針降解，使報告熒光基團與淬滅熒光基團分離，報告熒光基團發(fā)出的熒光信號不再被淬滅，從而產(chǎn)生可檢測的熒光信號。熒光信號強度同樣與 PCR 產(chǎn)物的數(shù)量相關(guān)，以此實現(xiàn)對目標(biāo)核酸的定量檢測。

樣本采集：根據(jù)實驗?zāi)康暮蜆颖绢愋?，采用合適的方法進(jìn)行樣本采集。如采集血清或血漿樣本時，需嚴(yán)格按照無菌操作規(guī)范進(jìn)行靜脈采血，分離血清或血漿；采集組織樣本時，使用無菌器械獲取組織，并迅速放入液氮或 - 80℃冰箱中保存，避免樣本降解。

樣本處理：對于不同類型的樣本，需要進(jìn)行相應(yīng)的核酸提取處理。可使用 Qiagen 或其他品牌的核酸提取試劑盒，按照說明書的操作步驟提取病毒核酸。提取后的核酸樣本需進(jìn)行濃度和純度測定，可采用超微量紫外分光光度計或熒光定量法進(jìn)行檢測，確保核酸質(zhì)量符合實驗要求。

配制反應(yīng)體系：在無菌的 PCR 管中，按照以下比例配制反轉(zhuǎn)錄反應(yīng)體系（以 20 μL 體系為例）：

5×QuantiTect Reverse Transcription Buffer：4 μL

QuantiTect Reverse Transcriptase Mix：1 μL

RNase - free Water：補至 14 μL

模板 RNA：適量（根據(jù)樣本核酸濃度調(diào)整，一般為 1 - 10 μL）

混合均勻：用移液器輕輕吹打或振蕩 PCR 管，使反應(yīng)體系充分混合均勻，短暫離心（2000 - 3000 rpm，1 - 2 分鐘），使反應(yīng)液集中于管底。

反應(yīng)條件：將 PCR 管放入 PCR 儀中，設(shè)置反轉(zhuǎn)錄反應(yīng)條件：42℃孵育 30 分鐘（進(jìn)行反轉(zhuǎn)錄反應(yīng)），95℃孵育 15 分鐘（滅活反轉(zhuǎn)錄酶）。反應(yīng)結(jié)束后，將 cDNA 產(chǎn)物置于冰上或 - 20℃冰箱中保存?zhèn)溆谩?/span>

配制反應(yīng)體系：在無菌的 PCR 管或反應(yīng)板孔中，按照以下比例配制 PCR 反應(yīng)體系（以 20 μL 體系為例）：

2×QuantiTect PCR Master Mix：10 μL

ROX Reference Dye（根據(jù) PCR 儀型號選擇合適濃度）：1 μL

上游引物（10 μM）：0.5 μL

下游引物（10 μM）：0.5 μL

cDNA 模板或 DNA 模板：適量（根據(jù)反轉(zhuǎn)錄產(chǎn)物或樣本核酸濃度調(diào)整，一般為 1 - 5 μL）

RNase - free Water：補至 20 μL

混合均勻：用移液器輕輕吹打或振蕩反應(yīng)管或反應(yīng)板，使反應(yīng)體系充分混合均勻，短暫離心（2000 - 3000 rpm，1 - 2 分鐘），使反應(yīng)液集中于管底。

封板：如果使用反應(yīng)板，需使用封板膜將反應(yīng)板密封，確保密封良好，防止反應(yīng)過程中液體蒸發(fā)。

反應(yīng)條件：將反應(yīng)管或反應(yīng)板放入實時熒光定量 PCR 儀中，設(shè)置 PCR 反應(yīng)條件：

預(yù)變性：95℃，15 分鐘（激活熱穩(wěn)定 DNA 聚合酶，使模板 DNA 變性）

循環(huán)反應(yīng)：94℃，15 秒（變性）；55 - 60℃，30 秒（退火，根據(jù)引物的 Tm 值調(diào)整）；72℃，30 秒（延伸），進(jìn)行 40 - 45 個循環(huán)

熔解曲線分析（可選，用于檢測 PCR 產(chǎn)物的特異性）：95℃，15 秒；60℃，1 分鐘；95℃，15 秒

啟動反應(yīng)：確認(rèn) PCR 儀的參數(shù)設(shè)置無誤后，啟動 PCR 反應(yīng)。在反應(yīng)過程中，實時熒光定量 PCR 儀會實時監(jiān)測熒光信號強度，并記錄數(shù)據(jù)。

標(biāo)準(zhǔn)曲線法：使用已知濃度的病毒核酸標(biāo)準(zhǔn)品（如試劑盒提供的陽性對照或自行制備的標(biāo)準(zhǔn)品），進(jìn)行梯度稀釋后，按照上述實驗操作步驟進(jìn)行 PCR 反應(yīng)，繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線（Ct 值與標(biāo)準(zhǔn)品濃度的對數(shù)呈線性關(guān)系）。根據(jù)樣本的 Ct 值，在標(biāo)準(zhǔn)曲線上查找對應(yīng)的核酸濃度，從而實現(xiàn)對樣本中病毒核酸的定量分析。

相對定量法：如果只需要比較不同樣本之間病毒核酸的相對表達(dá)量，可采用相對定量法。選擇一個內(nèi)參基因（如 β - actin、GAPDH 等），同時對樣本中的內(nèi)參基因和目標(biāo)病毒核酸進(jìn)行 PCR 反應(yīng)，通過計算目標(biāo)基因與內(nèi)參基因的 Ct 值差值（ΔCt），以及不同樣本之間的 ΔΔCt 值，來分析目標(biāo)病毒核酸在不同樣本中的相對表達(dá)變化。

嚴(yán)格按照說明書要求的儲存條件保存試劑，避免試劑因儲存不當(dāng)而失效。

使用前將試劑從冰箱中取出，置于室溫下解凍，并充分混勻，但要避免劇烈振蕩，防止產(chǎn)生氣泡。

試劑使用過程中，應(yīng)使用無菌的移液器和吸頭，避免交叉污染。每次取試劑后，及時將試劑管蓋緊，放回冰箱保存。

樣本采集和處理過程中，需嚴(yán)格遵守?zé)o菌操作規(guī)范，防止樣本被外源核酸污染，導(dǎo)致假陽性結(jié)果。

對于高致病性病毒樣本，需在生物安全實驗室中按照相應(yīng)的生物安全等級進(jìn)行操作，確保操作人員的安全。

樣本核酸提取過程中，要注意操作的準(zhǔn)確性和穩(wěn)定性，確保提取的核酸質(zhì)量符合實驗要求。提取后的核酸樣本應(yīng)盡快進(jìn)行檢測，如需保存，可置于 - 80℃冰箱中，但避免多次凍融。

實時熒光定量 PCR 儀需定期進(jìn)行校準(zhǔn)和維護(hù)，確保儀器的性能穩(wěn)定和檢測結(jié)果的準(zhǔn)確性。

在使用 PCR 儀前，檢查儀器的運行狀態(tài)，確保儀器的溫度、熒光檢測等功能正常。

反應(yīng)板和封板膜需與 PCR 儀兼容，封板時要確保密封良好，防止反應(yīng)過程中液體蒸發(fā)和污染。

在進(jìn)行實驗前，需合理設(shè)計實驗方案，設(shè)置足夠的重復(fù)樣本和對照樣本（如陽性對照、陰性對照、空白對照等），以確保實驗結(jié)果的可靠性和可重復(fù)性。

對于不同類型的病毒和樣本，需根據(jù)其特點和實驗需求，選擇合適的引物和探針，并進(jìn)行預(yù)實驗，優(yōu)化實驗條件。

原因：可能是引物或探針設(shè)計不合理、引物或探針濃度過低、模板核酸質(zhì)量不佳、反應(yīng)體系中存在抑制劑、PCR 反應(yīng)條件不合適等。

解決方法：重新設(shè)計引物或探針，確保其特異性和有效性；適當(dāng)提高引物或探針的濃度；重新提取樣本核酸，確保核酸質(zhì)量；檢查反應(yīng)體系中是否存在抑制劑，如樣本中可能含有蛋白質(zhì)、多糖等物質(zhì)，可通過純化核酸或稀釋樣本進(jìn)行處理；優(yōu)化 PCR 反應(yīng)條件，如調(diào)整退火溫度、延伸時間等。

原因：可能是模板核酸濃度過高或過低、引物或探針濃度不合適、dNTPs 濃度不足、熱穩(wěn)定 DNA 聚合酶活性下降、PCR 反應(yīng)循環(huán)數(shù)設(shè)置不合理等。

解決方法：對模板核酸進(jìn)行梯度稀釋，選擇合適的濃度進(jìn)行實驗；調(diào)整引物或探針濃度；檢查 dNTPs 濃度，確保其充足；更換熱穩(wěn)定 DNA 聚合酶；根據(jù)實驗需求，合理調(diào)整 PCR 反應(yīng)循環(huán)數(shù)。

原因：可能是模板核酸濃度過低、引物或探針效率低、PCR 反應(yīng)條件不合適、反應(yīng)體系中存在抑制劑等。

解決方法：增加模板核酸的上樣量；優(yōu)化引物或探針設(shè)計，提高其擴增效率；調(diào)整 PCR 反應(yīng)條件，如提高退火溫度、延長延伸時間等；對樣本進(jìn)行純化處理，去除抑制劑。

原因：可能是實驗過程中發(fā)生交叉污染、引物或探針特異性差、陽性對照濃度過高、PCR 反應(yīng)條件過于寬松等。

解決方法：加強實驗操作的規(guī)范性，使用帶濾芯的吸頭，避免交叉污染；重新設(shè)計引物或探針，提高其特異性；降低陽性對照的濃度；優(yōu)化 PCR 反應(yīng)條件，提高反應(yīng)的嚴(yán)謹(jǐn)性。

原因：可能是引物二聚體形成、非特異性擴增、模板核酸不純等。

解決方法：降低引物濃度，優(yōu)化引物設(shè)計，減少引物二聚體的形成；調(diào)整 PCR 反應(yīng)條件，提高反應(yīng)的特異性；對模板核酸進(jìn)行進(jìn)一步純化處理，去除雜質(zhì)。