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漲知識|qPCR專場四:問題圖表分析及實(shí)驗(yàn)案例

2023-8-25  閱讀(173)

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漲知識|qPCR專場四:問題圖表分析及實(shí)驗(yàn)案例

 


熒光定量PCR是實(shí)驗(yàn)室中出鏡率非常高的一種檢測方法。該方法通過在PCR體系中添加熒光基團(tuán)來記錄DNA產(chǎn)物的累積情況,從而達(dá)到對PCR過程進(jìn)行實(shí)時監(jiān)控的目的,并且可以通過數(shù)據(jù)分析計算出起始模板量,這就是“熒光定量"中“定量"一詞的來源。
 
熒光定量PCR實(shí)驗(yàn)因?yàn)殪`敏度高所以經(jīng)常是差之毫厘謬以千里,所以在實(shí)驗(yàn)過程中,我們需要注意諸多細(xì)節(jié),謹(jǐn)慎操作。小伙伴們看到這里就要著急了,我怎樣才能做好qPCR實(shí)驗(yàn),拿到實(shí)驗(yàn)結(jié)果,發(fā)表高分文章呢?

 

在熒光定量PCR實(shí)驗(yàn)中,難免會遇到一些奇怪的擴(kuò)增曲線或熔解曲線,不管是開辟新課題新項目中的預(yù)實(shí)驗(yàn)探索還是持續(xù)驗(yàn)證中的反復(fù)測試,都有可能遇見。雖說異常曲線可能會千奇百怪,但仔細(xì)分析,了解清楚具體原因就有助于我們順利完成實(shí)驗(yàn),不用再投入更多時間精力重復(fù)實(shí)驗(yàn)。

 

 

擴(kuò)增曲線異常
 
無擴(kuò)增曲線出現(xiàn)
 
 

 

原因分析及解決方案:
熒光定量儀器參數(shù)設(shè)置錯誤,上機(jī)前對應(yīng)熒光信號采集開關(guān)沒有打開。可在問題數(shù)據(jù)的運(yùn)行程序中檢查,相關(guān)采集開關(guān)是否正常開啟。若未正常開啟,則需要重新準(zhǔn)備上機(jī)反應(yīng)體系,設(shè)置好對應(yīng)的參數(shù),打開采集開關(guān)再次檢測。

 

 

儀器界面展示處以7500為例

 

 
有光信號但無Ct值
 
 

 

原因分析及解決方案:
擴(kuò)增曲線線性圖顯示為一條筆直的線或?qū)?shù)圖的▲Rn不超過1且在低水平徘徊,則無擴(kuò)增。
 
1)可能是引物降解帶來的影響。當(dāng)引物儲存不當(dāng)時會導(dǎo)致引物降解并失去特異性,進(jìn)而降低擴(kuò)增效率??赏ㄟ^核酸電泳的方式檢測引物的完整性,若原先的特異性條帶變成彌散帶,則表示引物發(fā)生降解。針對引物保存,需考慮以下四個建議:
  •  引物凍干粉在長時間儲存和儲存溫度上有著更強(qiáng)的靈活性和保障;

  • 引物濃度對穩(wěn)定性也會產(chǎn)生影響,不建議以低于10μM的濃度儲存引物,在大多數(shù)情況下,100μM的引物使用更加靈活容易;

  • 引物或探針也需和RNA一樣分裝儲存,以盡可能減少反復(fù)凍融帶來的影響;

  • TE緩沖液的儲存環(huán)境比水更加穩(wěn)定。

2)可能是模板濃度太低造成檢測困難。建議減少cDNA稀釋濃度重復(fù)實(shí)驗(yàn)即可,通常情況下,未知濃度的樣品先從原液開始測。
3)可能是模板降解。這種情況下,需要重新制備RNA模板或cDNA模板,重新實(shí)驗(yàn)。

 

 
擴(kuò)增曲線對數(shù)圖基線期異常
 
 


原因分析及解決方案:

在對數(shù)圖擴(kuò)增曲線中,若基線期為連續(xù)曲線,則有可能是基線期設(shè)置循環(huán)周期偏少造成。可以在設(shè)置中增大基線的終點(diǎn)值,調(diào)整后可恢復(fù)正常,如下圖所示:

 


 

 
擴(kuò)增曲線對數(shù)圖曲線分段
 
 


原因分析及解決方案:

在對數(shù)圖擴(kuò)增曲線中,若擴(kuò)增曲線基線期連續(xù)且后續(xù)出現(xiàn)明顯分段現(xiàn)象,則有可能是基線期設(shè)置循環(huán)周期偏多造成??梢栽谠O(shè)置中減小基線的終點(diǎn)值,調(diào)整后可恢復(fù)正常,如下圖所示:


 

 
擴(kuò)增曲線線型圖不平滑
 
 

原因分析及解決方案:
1)PCR反應(yīng)管可能沒有蓋緊,當(dāng)儀器進(jìn)行熱循環(huán)時,反應(yīng)液出現(xiàn)揮發(fā)、泄露。在上機(jī)前,建議用潔凈的手套或鑷子壓緊管蓋以避免該風(fēng)險。
2)PCR反應(yīng)液在管中可能出現(xiàn)掛壁,在反應(yīng)進(jìn)行時由于重力因素反應(yīng)液下滑或最終進(jìn)入反應(yīng)體系。在上機(jī)前,建議使用桌面小離心機(jī)對PCR管進(jìn)行離心,肉眼觀察無反應(yīng)液掛壁,上機(jī)過程小心為上,減少抖動和碰撞發(fā)生。
3)可能是體系中抑制物較多,導(dǎo)致熒光不穩(wěn)定。當(dāng)RNA提取樣本充裕的情況下,建議重新提取高純度RNA進(jìn)行反轉(zhuǎn)錄、熒光定量。當(dāng)RNA提取樣本缺失或稀少的情況下,建議稀釋cDNA后重新上機(jī),減少抑制物的抑制作用。

 

 

4)可能是儀器開機(jī)后長時間運(yùn)行,使用過度,導(dǎo)致熒光收集不穩(wěn)定。建議讓儀器待機(jī)/關(guān)機(jī)一段時間后,重新開啟運(yùn)行。

 

 
擴(kuò)增曲線線性圖無法到達(dá)平臺期
 
 

原因分析及解決方案:
1) 平臺期對Ct值影響不大。計算Ct值時,是通過閾值線(上圖綠色水平線)與擴(kuò)增曲線指數(shù)期的交叉點(diǎn)進(jìn)行的,故平臺期對于Ct值的影響不大。
2) 無法到達(dá)平臺期可能是因?yàn)檠h(huán)數(shù)設(shè)置太少,增加循環(huán)數(shù)可有助于觀察到明顯的平臺期。
3) 當(dāng)試劑擴(kuò)增效率比較低時,酶活力不持久,下降較快,平臺期也可能會出現(xiàn)不明顯的現(xiàn)象??赏ㄟ^增加鎂離子濃度或更換效力更強(qiáng)的酶解決該問題。

 

 
擴(kuò)增曲線線性圖平臺期“低頭"
 
 

原因分析及解決方案:
可能是基線選取的范圍不正確,其中的基線終點(diǎn)大于曲線對應(yīng)的Ct值。當(dāng)模板DNA投入過多時(投入高濃度cDNA原液或cDNA上樣比例>20%),基線范圍仍取為3-15,其中會包含部分?jǐn)U增信號,從而導(dǎo)致閾值線過高,對應(yīng)的平臺期在計算時會出現(xiàn)下滑現(xiàn)象。這種情況下,可減少基線期終點(diǎn),重新分析數(shù)據(jù)。

 

 
擴(kuò)增曲線Ct值偏大
 
 

原因分析及解決方案:
1) 若目的基因在樣品中的豐度較低,則可能出現(xiàn)Ct值偏大的現(xiàn)象。該情況下可選擇增加反轉(zhuǎn)錄時RNA的投入量或者減少cDNA的稀釋倍數(shù)可調(diào)整對應(yīng)的Ct值。當(dāng)RNA投入量是原先的2倍時,Ct值對應(yīng)可減少1(21=2);當(dāng)cDNA稀釋倍數(shù)由8倍調(diào)整為2倍時,Ct值對應(yīng)可減少2(22=4)
2) 設(shè)計的目的片段過長,僅部分目的片段在每個循環(huán)中擴(kuò)增,從而導(dǎo)致Ct值偏大。建議將目的擴(kuò)增片段長度設(shè)計為80-200bp之內(nèi),不建議超過300bp。
3) 體系中可能存在抑制劑,導(dǎo)致擴(kuò)增效率下降,最終使得Ct值偏大。建議減少投入的模板量或重新制備純度更高的RNA

 

 
擴(kuò)增曲線重復(fù)性差
 
 

原因分析及解決方案:
1) 可能是加樣誤差大導(dǎo)致的重復(fù)性差。儀器方面,需要每年對移液槍進(jìn)行一次校正。在操作方面,采取先加大體積后加小體積液體的方式。移液器使用時采取二檔吸液一檔出液的方式,若下一次移液不更換槍頭,則第二槍開始一檔吸液一檔出液。
2) 試劑或預(yù)混體系沒有混勻,也會導(dǎo)致重復(fù)性偏差。建議在分裝反應(yīng)液前,先將反應(yīng)液以震蕩或吹打的形式進(jìn)行充分混勻。上機(jī)之前,將PCR管離心,使得所有的液體都在反應(yīng)管底部。
3) 儀器未使用ROX校正,則也可能發(fā)生重復(fù)性偏差的現(xiàn)象。最好選用ROX校正。當(dāng)所用試劑不含ROX時或ROX添加濃度不合適時,將ROX校正關(guān)閉。
4)當(dāng)基因本身豐度低或模板濃度低時,Ct值會在30以上,同時Ct值重復(fù)性差。該情況下,建議將復(fù)孔數(shù)增加至4-6個,從中適當(dāng)舍棄1-2個偏差較大的數(shù)據(jù)。

 

 
擴(kuò)增曲線雜亂無規(guī)律
 
 

原因分析及解決方案:

可能是ROX濃度與機(jī)型不能匹配造成這種現(xiàn)象。建議在設(shè)置中找到Passive Reference后將ROX改為None,重新分析即可獲取正常的擴(kuò)增曲線,如下圖所示。

 

 

 

熔解曲線異常
 
熔解曲線單峰但不尖銳
 
 

原因分析及解決方案:
可能存在大小相近的非特異擴(kuò)增,可以通過兩種方法進(jìn)行判斷,簡單的方式是觀察起峰到落峰的溫度跨度,若跨度不大于7℃,則可視為單峰。另外相對復(fù)雜的方法是將產(chǎn)物進(jìn)行高濃度瓊脂糖電泳(如3%瓊脂糖)進(jìn)行輔助判斷。

 

 
熔解曲線為雙峰且較低峰Tm在80℃之前
 
 

原因分析及解決方案:
引物二聚體在引物對之間存在部分序列同源性時會形成,其長度通常會低于80bp,在70℃范圍區(qū)間會形成低熒光且更寬的波峰。具體的波峰大小會根據(jù)引物二聚體的大小和GC含量而發(fā)生變化。進(jìn)行熒光定量之前,檢查引物二聚體的方法有多種,可視化方法是進(jìn)行核酸電泳,形成的引物二聚體通常會在凝膠底部附近顯示為彌散帶。減少引物二聚體的方法如下:
  • 優(yōu)化熱循環(huán)條件,主要是提高退火溫度;

  • 降低引物濃度。在多數(shù)情況下,引物終濃度為200 nM,可選擇降低至60 nM;

  • 第一次針對一個靶標(biāo)設(shè)計引物時,可嘗試設(shè)計三對引物組,選用其中高、特異性表現(xiàn)引物進(jìn)行實(shí)驗(yàn)。

 

 
熔解曲線為雙峰且較低峰Tm在80℃之后
 
 

原因分析及解決方案:
1)可能是cDNA樣本中存在gDNA污染,引物設(shè)計時未跨內(nèi)含子造成的其他擴(kuò)增產(chǎn)物。建議設(shè)計引物時跨內(nèi)含子且不在單一外顯子模塊中設(shè)計,或在RNA提取時,選用帶gDNA去除的RNA提取試劑盒,或是在反轉(zhuǎn)錄獲取cDNA時,選用帶gDNA去除的反轉(zhuǎn)錄試劑。
2)可能是引物特異性過差導(dǎo)致的非特異擴(kuò)增。建議將引物序列輸入至NCBI中進(jìn)行特異性分析,檢測在同物種中是否存在其他配對序列。

 

 
陰性對照(NTC)起峰且有熔解曲線峰
 
 
NTC:又稱為無模板對照,指除DNA或cDNA樣品以外的所有反應(yīng)組分。在這些對照中檢測到的擴(kuò)增通常是由于引物二聚體或擴(kuò)增的PCR產(chǎn)物污染造成。這兩類污染會導(dǎo)致相關(guān)靶標(biāo)的表達(dá)水平被人為的升高。
Ct>35,熔解曲線Tm值<80℃


原因分析及解決方案:

引物二聚體導(dǎo)致的非特異擴(kuò)增,具體解決方案可見上述【熔解曲線為雙峰且較低峰Tm在80℃之前】。其中值得注意的點(diǎn)是,若實(shí)驗(yàn)組和陰性對照組之間的Ct值差值遠(yuǎn)大于10,則表示引物二聚體對于靶標(biāo)片段擴(kuò)增的影響不大,數(shù)據(jù)可用于分析。

Ct值<35,NTC熔解曲線與基因熔解曲線峰形重疊。

 


原因分析及解決方案:
這種情況下,多是由于體系中出現(xiàn)污染,例如水中、引物中、試劑中出現(xiàn)對應(yīng)的模板,多為槍頭未更換帶來的交叉污染。該情況下,需要以控制變量的方式逐步排查污染源。

 

 
熔解曲線峰型雜亂
 
 

原因分析及解決方案:
1) 可能是反應(yīng)體系中出現(xiàn)污染,建議結(jié)合陰性對照結(jié)果確認(rèn)污染情況,從水、引物、酶和環(huán)境等注意排除污染。
2) 可能是熒光定量試劑暴露在強(qiáng)光或者高溫下導(dǎo)致試劑失效進(jìn)而導(dǎo)致該問題出現(xiàn),建議用新的熒光定量試劑進(jìn)行對比試驗(yàn)。
3) 耗材與儀器不匹配,不能滿足熒光定量儀器光源對于耗材的需求。這種情況下,需確認(rèn)儀器所對應(yīng)的耗材要求,選擇正確且質(zhì)量有保證的耗材進(jìn)行重復(fù)試驗(yàn)。
4)儀器長時間未校正也可能會引發(fā)該情況。儀器方面建議每一年校正,以保證數(shù)據(jù)的穩(wěn)定性。

 

 
熔解曲線前端起雜峰
 
 


原因分析及解決方案:
可能是ROX濃度與機(jī)型不能匹配造成這種現(xiàn)象。建議在設(shè)置中找到Passive Reference后將ROX改為None,重新分析即可獲取正常的熔解曲線,如下圖所示。

 

 

 

以上是對熒光定量PCR中問題圖表分析及實(shí)驗(yàn)案例的介紹,相信小伙伴們通過小翌的介紹,對如何分析問題圖表已經(jīng)有一定的了解啦。關(guān)于如何做好qPCR實(shí)驗(yàn),小翌會陸續(xù)在公眾號里傳授秘籍噠,敬請期待哦。

 

方法

分類

產(chǎn)品名稱

貨號

RNA提取

同Trizol提取

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動物組織/細(xì)胞總RNA提取,避開有毒試劑,最快15 min完成

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簡單植物總RNA提取,避開有毒試劑,最快40min完成

MolPure® Plant RNA Kit 植物RNA提取試劑盒

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多糖多酚植物總RNA提取,最快30min完成

MolPure® Plant Plus RNA Kit 多糖多酚植物RNA提取試劑盒

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細(xì)胞總RNA提取,避開有毒試劑,最快8 min完成

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qPCR染料法

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Hieff UNICON® qPCR SYBR Green Master Mix (Low Rox)

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反轉(zhuǎn)錄試劑

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5 min快速反轉(zhuǎn),最長可滿足14 kb cDNA合成,含gDNA去除(下游應(yīng)用PCR/qPCR)-常規(guī)版

Hifair® AdvanceFast 1st Strand cDNA Synthesis Kit(No Dye)

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miRNA反轉(zhuǎn)錄試劑盒(加A法)

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