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翌圣鎂孚泰突破性成果:低dsRNA T7 RNA聚合酶突變體,助力mRNA療法研究!

2024-3-15  閱讀(199)

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隨著生物技術(shù)的飛速發(fā)展,mRNA療法作為一種新興的治療手段,因其可編程性強(qiáng)、響應(yīng)速度快等優(yōu)勢(shì)備受關(guān)注。在mRNA疫苗和基因治療等領(lǐng)域中,高效合成高質(zhì)量的mRNA是實(shí)現(xiàn)療法目標(biāo)的關(guān)鍵步驟。而在這一過(guò)程中,T7 RNA聚合酶扮演著至關(guān)重要的角色,它能夠高效地催化體外合成mRNA的過(guò)程。

 

盡管T7 RNA聚合酶在mRNA合成中發(fā)揮著重要作用,但實(shí)際操作中經(jīng)常會(huì)產(chǎn)生雙鏈RNA(dsRNA)這一副產(chǎn)物。dsRNA的存在不僅降低了mRNA的產(chǎn)量和純度,還可能激發(fā)非特異性免疫反應(yīng),影響療效和安全性。因此,減少dsRNA的產(chǎn)生成為了行業(yè)的一個(gè)迫切需求。

 

目前,降低dsRNA的方法主要包括優(yōu)化反應(yīng)條件和使用輔助酶等。這些方法雖然可以在一定程度上減少dsRNA的產(chǎn)生,但往往伴隨著操作復(fù)雜、成本提高等問(wèn)題。與之相比,通過(guò)直接改造T7 RNA聚合酶來(lái)降低dsRNA的產(chǎn)生則是一種更為根本的解決方案。酶定向改造技術(shù)可以通過(guò)精確改變酶的氨基酸序列或結(jié)構(gòu),從而改善其催化特性,提高產(chǎn)物的純度和產(chǎn)率。對(duì)于T7 RNA聚合酶而言,針對(duì)性的改造不僅可以減少dsRNA的產(chǎn)生,還能提升合成mRNA的整體效率和質(zhì)量。

 

 

 
 
 
 
翌圣鎂孚泰生物突破性成果
 
 
 
 

作為mRNA體外合成原料供應(yīng)商(了解更多),翌圣生物憑借子公司鎂孚泰生物的ZymeEditor定向進(jìn)化平臺(tái)的能力,持續(xù)在進(jìn)化mRNA體外合成的核心酶原料——T7 RNA聚合酶。為了盡可能消除體外轉(zhuǎn)錄過(guò)程產(chǎn)生的dsRNA等副產(chǎn)物,鎂孚泰生物進(jìn)化團(tuán)隊(duì)通過(guò)理性設(shè)計(jì)與定向篩選結(jié)合的方式對(duì)T7 RNA聚合酶進(jìn)行改造。

 

根據(jù)文獻(xiàn)報(bào)導(dǎo),副產(chǎn)物dsRNA的產(chǎn)生主要包括兩種來(lái)源(圖1):第一種是轉(zhuǎn)錄早期T7 RNA聚合酶由起始構(gòu)象轉(zhuǎn)變?yōu)檠由鞓?gòu)象時(shí),轉(zhuǎn)錄三元復(fù)合物極易解離[1],伴隨著大量長(zhǎng)度在20 nt左右的短RNA鏈(即Abortive RNA)釋放至體系中,這部分RNA即扮演“引物“的角色與長(zhǎng)RNA鏈互補(bǔ)配對(duì),并在T7 RNA聚合酶的RNA依賴的RNA聚合活性(RDRP活性)作用下延伸產(chǎn)生dsRNA[2,3];第二種則由T7 RNA聚合酶具備的末端核糖核苷轉(zhuǎn)移活性而引發(fā),當(dāng)轉(zhuǎn)錄反應(yīng)進(jìn)行到線性模板末端時(shí),T7 RNA聚合酶會(huì)在不依賴模板的情況下隨機(jī)增加若干個(gè)核糖核苷酸,這些核苷酸組成的“隨機(jī)引物"即有可能反向折疊與目標(biāo)mRNA區(qū)域發(fā)生互補(bǔ)配對(duì)進(jìn)而延伸產(chǎn)生dsRNA,通過(guò)回環(huán)產(chǎn)生的dsRNA稱為loopback dsRNA[3,4]。因此,為了減少dsRNA副產(chǎn)物,T7 RNA聚合酶改造的重點(diǎn)在于穩(wěn)定早期轉(zhuǎn)錄三元復(fù)合物,或減弱T7 RNA聚合酶的末端轉(zhuǎn)移活性和RDRP活性。

圖1. 能壘示意圖及dsRNA形成原理

 

在進(jìn)行T7 RNA 聚合酶改造過(guò)程中,鎂孚泰生物一方面通過(guò)結(jié)構(gòu)及自由能分析,發(fā)現(xiàn)在T7 RNA聚合酶構(gòu)象變化的同時(shí)也伴隨著能量的變化,且延伸構(gòu)象的自由能顯著高于起始構(gòu)象,意味著轉(zhuǎn)錄過(guò)程需要越過(guò)較高的能壘才能產(chǎn)生完整的mRNA鏈。高能壘不利于構(gòu)象平穩(wěn)轉(zhuǎn)變,為此,團(tuán)隊(duì)借助虛擬篩選手段鎖定了20余個(gè)熱點(diǎn)氨基酸,并構(gòu)建了相應(yīng)的定點(diǎn)飽和文庫(kù)。另一方面,考慮到關(guān)于T7 RNA聚合酶的末端轉(zhuǎn)移及RDRP活性相關(guān)的功能、位點(diǎn)及結(jié)構(gòu)域的報(bào)導(dǎo)較少,且由于功能相近這兩種活性極可能與T7 RNA聚合酶主反應(yīng)的轉(zhuǎn)錄活性(即DNA依賴的RNA聚合活性,DDRP)共享關(guān)鍵位點(diǎn),難以找到熱點(diǎn)氨基酸進(jìn)行定點(diǎn)改造。因此,鎂孚泰生物同時(shí)構(gòu)建了基于易錯(cuò)PCR的數(shù)個(gè)隨機(jī)突變文庫(kù),結(jié)合ZymeEditor平臺(tái)的進(jìn)化通量,單個(gè)文庫(kù)的多樣性超過(guò)106。

 

為了兼顧T7 RNA聚合酶的產(chǎn)量并監(jiān)測(cè)體外轉(zhuǎn)錄反應(yīng)中dsRNA的含量,鎂孚泰生物參照優(yōu)化后的轉(zhuǎn)錄模板,精心設(shè)計(jì)了多個(gè)分子信標(biāo)(FRET RNA探針),分別靶向目標(biāo)mRNA產(chǎn)物的不同區(qū)域,將反應(yīng)物產(chǎn)量、完整度以及體系內(nèi)dsRNA含量等信息與熒光信號(hào)關(guān)聯(lián),體系的熒光強(qiáng)度越強(qiáng),突變體的性能越有優(yōu)勢(shì)。理論上,該篩選方法可按不同探針的熒光強(qiáng)度排序,分別獲得高產(chǎn)或Abortive RNA減少的T7 RNA聚合酶突變體,以及完整度提升或loopback dsRNA降低的T7 RNA聚合酶突變體。將反應(yīng)模板更換為RNA時(shí)還可負(fù)向篩選突變體的RDRP活性,提升T7 RNA聚合酶的模板選擇能力。此外,在液滴反應(yīng)體系中添加修飾核苷酸、帽類似物,以及提高反應(yīng)溫度還可以進(jìn)一步篩選耐受非天然底物、熱穩(wěn)定性提升的T7 RNA聚合酶突變體。

 

根據(jù)文庫(kù)大小,鎂孚泰生物分別開發(fā)了基于熒光激活液滴分選(FADS)的超高通量篩選流程(圖2),以及基于傳統(tǒng)孔板法(MTPS)的高通量篩選流程(圖3)。經(jīng)過(guò)多輪實(shí)驗(yàn),合計(jì)篩選超過(guò)107個(gè)突變體,獲得多個(gè)dsRNA顯著降低的突變體,其中RP051、RP059突變體反應(yīng)中由Abortive RNA引起的dsRNA降低,提示這些聚合酶突變體的延伸構(gòu)象更穩(wěn)定;RP057、RP078突變體反應(yīng)中l(wèi)oopback dsRNA含量降低,提示這些突變體的末端轉(zhuǎn)移活性或RDRP活性被減弱。

圖2. FADS篩選流程【5】

 

圖3. MTPS篩選流程

 

鑒于上述突變體的性能優(yōu)勢(shì)來(lái)源于不同機(jī)制,鎂孚泰生物針對(duì)它們構(gòu)建了DNA shuffling文庫(kù),篩選后最終獲得了性能更優(yōu)的組合突變體RP080-RP082(圖4)。

圖4. 酶進(jìn)化歷程及突變體性能表征

 

經(jīng)過(guò)定量分析,如圖5所示,在9 kb轉(zhuǎn)錄模板、共轉(zhuǎn)錄加帽條件下,使用天然核苷酸時(shí),野生型T7 RNA聚合酶產(chǎn)物中dsRNA約為2.9 ng/μg,A公司競(jìng)品約0.18 ng/μg。而鎂孚泰生物改造的各T7 RNA 聚合酶突變體dsRNA產(chǎn)量均<0.10 ng/μg,尤其突變體RP082的dsRNA產(chǎn)量?jī)H為0.015 ng/μg,相比于野生型提升近200倍,比競(jìng)品提升12倍。經(jīng)過(guò)反復(fù)測(cè)試,突變體的降低dsRNA的性能優(yōu)勢(shì)在不同反應(yīng)條件下均能穩(wěn)定復(fù)現(xiàn),表明上述突變體具有較好的體系兼容性,也為后續(xù)反應(yīng)體系優(yōu)化以進(jìn)一步降低dsRNA產(chǎn)量奠定了基礎(chǔ)。此外,F(xiàn)ADS的篩選還獲得了多個(gè)產(chǎn)物完整度、熱穩(wěn)定性提升的突變體,可滿足更多的體外轉(zhuǎn)錄應(yīng)用場(chǎng)景。

圖5. T7 RNA聚合酶突變體產(chǎn)物dsRNA檢測(cè)圖

 

 
 
 
 

客戶試用滿意度高 

 
 
 
 
前,已有多家合作伙伴對(duì)鎂孚泰生物改造的T7 RNA聚合酶突變體進(jìn)行了試用,得到客戶的高度認(rèn)可。他們表示,新酶的使用簡(jiǎn)化了mRNA的純化過(guò)程,提高了工作效率,并在多個(gè)應(yīng)用場(chǎng)景中展現(xiàn)出 的性能。

 

目前我們還有少量試用名額,如您需要試用或者改造酶的其他性能,點(diǎn)擊閱讀原文在線填寫需求表!

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關(guān)于鎂孚泰

鎂孚泰生物科技(上海)有限公司(鎂孚泰生物,Molefuture)是翌圣生物科技(上海)股份有限公司旗下的全資子公司,是一家以酶進(jìn)化技術(shù)為驅(qū)動(dòng)、專注于提供酶改造定制化解決方案的創(chuàng)新型企業(yè)。依托于翌圣生物,鎂孚泰生物現(xiàn)有六大技術(shù)平臺(tái):ZymeEditor創(chuàng)新酶進(jìn)化平臺(tái)、多宿主高效表達(dá)平臺(tái)、發(fā)酵工藝開發(fā)平臺(tái)、純化工藝開發(fā)平臺(tái)、超潔凈酶生產(chǎn)平臺(tái)以及酶分析與質(zhì)控平臺(tái)?;谶@六大技術(shù)平臺(tái),鎂孚泰生物可提供酶定向改造、新酶開發(fā)、酶工藝開發(fā)以及GMP級(jí)別規(guī)?;a(chǎn)的全套定制解決方案,以滿足酶在體外診斷、生物醫(yī)藥、合成生物、醫(yī)療美容、醫(yī)藥中間體等領(lǐng)域的應(yīng)用需求。

 

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參考文獻(xiàn):

[1] Sousa R, Mukherjee S. T7 RNA polymerase[J]. Progress in nucleic acid research and molecular biology, 2003: 1-41.

[2] Steitz T A. The structural changes of T7 RNA polymerase from transcription initiation to elongation[J]. Current opinion in structural biology, 2009, 19(6): 683-690.[3] Vallejo D, Nikoomanzar A, Paegel B M, et al. Fluorescence-activated droplet sorting for single-cell directed evolution[J]. ACS synthetic biology, 2019, 8(6): 1430-1440.

[4] Gholamalipour Y, Karunanayake Mudiyanselage A, Martin C T. 3′ end additions by T7 RNA polymerase are RNA self-templated, distributive and diverse in character—RNA-Seq analyses[J]. Nucleic acids research, 2018, 46(18): 9253-9263.

[5] Vallejo D, Nikoomanzar A, Paegel BM, Chaput JC. Fluorescence-Activated Droplet Sorting for Single-Cell Directed Evolution. ACS Synth Biol. 2019 Jun 21;8(6):1430-1440. 


 


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