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PCR數(shù)據(jù)處理秘籍:干貨滿滿,看完還想再來一篇!

2024-6-26  閱讀(420)

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通常我們做完熒光定量PCR后,會通過下機數(shù)據(jù)來分析基因表達情況。這篇干貨將會給大家詳細分享熒光定量PCR數(shù)據(jù)處理方法,希望能給小伙伴們一定的幫助。

 

相對定量法中常見的是比較Ct法,其中主要包括△△Ct法,Pfaffl法和CT法,目前諸多科研人員采用最多的是△△Ct法。雖然該方法應(yīng)用廣泛,但是很多人卻不了解其中的原理。知其然,知其所以然。小翌接下來給小伙伴們講一下△△Ct法的原理。

 


△△Ct法原理

 

Ct值:每個反應(yīng)管中熒光信號達到設(shè)定的熒光閾值時所需要的循環(huán)數(shù)。起始模板拷貝數(shù)越多, Ct值則越小。

 

理論條件下,DNA擴增是以半保留復制的形式每個循環(huán)增加一倍,由100條變200條,由200條變400條,由400條變800條等等,用數(shù)學表達式來說就是2^Ct。但是實際情況中,擴增效率不是100%的,增量的表達形式則變成了(1+e)^Ct,其中e表示的是擴增效率。

 

擴增產(chǎn)量=起始模板量×(1+e)^Ct

 

由于不同反應(yīng)條件下,e值不一樣,為便捷地計算,分析數(shù)據(jù)時將e默認為100%,那么擴增產(chǎn)量=起始模板量×2^Ct。

 

看到這,有小伙伴可能會想,在一樣的產(chǎn)物量(熒光信號水平)下,比較Ct值,那我就可以比較不同實驗組的起始模板量,是不是就可以得出基因表達差異的結(jié)果了。然而事實并非如此,不同實驗組難以保證上樣量的一致性、生物本身的一致性、整體操作誤差的一致性,做出來的結(jié)果是有偏差的,甚至可能是相反的。這里給小伙伴們舉個例子。

藥物測試實驗案例

測試一款減少黑色素表達的藥物,該藥物以灌胃的形式給藥至實驗組小鼠,對照組小鼠僅以正常飲用水進行灌胃,以往大量研究已表明該藥物對于黑色素表達有明顯的抑制作用。

 

 

如果研究目的基因,簡單僅以兩組的目的基因表達量相比,可以發(fā)現(xiàn),實驗組生成黑色素的基因表達量相比于對照組要多四倍。

 

 

然而已有大量研究證明該藥物抑制黑色素表達,計算結(jié)果與已有理論存在相悖的情況(也有可能是發(fā)現(xiàn)了新課題o(* ̄▽ ̄*)ブ)。為什么會出現(xiàn)這個結(jié)果呢?其原因可能主要是兩組小鼠RNA提取的時候處于不同的時間、提取樣本量不一樣、cDNA上樣量不一樣、cDNA濃度不一樣等等。

 

為避免各類潛在差異帶來的影響,需引入內(nèi)參基因,可見上圖右半部分。內(nèi)參基因通常是一種始終保持著低水平甲基化且一致處于活性轉(zhuǎn)錄狀態(tài)的基因,高度保守且在大多數(shù)情況下持續(xù)表達,其表達水平受環(huán)境因素影響較小。通常在檢測基因的表達水平時用作參照物,可用以校正操作、上樣量差異等帶來的實驗誤差,從而保證結(jié)果的準確性。

 

同樣樣本,在原測試目的基因的基礎(chǔ)上,加測內(nèi)參基因。對照組得到的目的基因與內(nèi)參基因之間的模板比值為正常老鼠目的基因的比例關(guān)系,理論狀態(tài)下,以該比例×實驗組老鼠恒定表達的內(nèi)參基因表達量即可獲得實驗組老鼠在正常狀態(tài)下目的基因的理論表達量,實際實驗組老鼠目的基因表達量除以理論表達值,即可計算出老鼠在藥物處理下,目的基因的表達量變化情況,具體如下:

 

 

以上結(jié)果可以得出,實驗組目的基因表達量僅為對照組的1/2,也符合以往研究報道。

 

 

是不是小伙伴們以為△△Ct法原理的描述到這里就結(jié)束了?不不不,我們上文中有提到實際情況中擴增產(chǎn)量=起始模板量×(1+e)^Ct,為便捷計算,分析數(shù)據(jù)時將擴增效率e默認為100%,那么擴增產(chǎn)量=起始模板量×2^Ct。我們在實際做實驗的時候,也要注意內(nèi)參基因和目的基因所對應(yīng)的擴增效率控制在接近100%或者基本一致,否則△△Ct法得出的結(jié)果和實際情況會有出入。

 

 

如上表格,若內(nèi)參基因和目的基因擴增效率上未控制在基本一致或接近100%,則在使用△△Ct法上會有一定的偏差風險。

 

 

數(shù)據(jù)處理案例解析

 

假設(shè)目前需要研究甲藥物對小鼠X基因表達的影響,以未經(jīng)過任何處理的小鼠作為對照組,實驗組為經(jīng)過不同量藥物處理過的小鼠,分別提取RNA進行反轉(zhuǎn)錄,以得到的cDNA為模板,選擇小鼠GAPDH基因作為內(nèi)參,進行qPCR實驗。

 

上機設(shè)置的qPCR孔如下

 

 

圖示說明:

1)NTC:以水代替模板,用來驗證PCR體系中是否存在污染,每一對引物都需要做NTC;

2)NRC:是指用未經(jīng)反轉(zhuǎn)錄的RNA作為模板,是對gDNA殘留的控制,每一個樣本都需要做NRC;

3)生物學重復:不同的樣本(ABC);

4)技術(shù)重復:實際上就是同一材料包括的復孔(123)。

下機處理的Excel數(shù)據(jù)如下

 

 

圖示說明:
1)0mg:未經(jīng)過任何處理的小鼠-對照組;
2)④:對照組校正后的數(shù)值;
3)③/④:每個小組校正后的數(shù)值比上對照組校正后的數(shù)值;
4)注意圖表上的數(shù)據(jù)在excel中采用了保留2位小數(shù)的形式,實際計算時不可忽略小數(shù)點后的所有數(shù)字,減少按數(shù)字的動作,活用Excel。

GraphPad中進行繪圖分析

 

 

 

 

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[2] Seki T, Yang Y, Sun X, et al. Brown-fat-mediated tumour suppression by cold-altered global metabolism. Nature. 2022;608(7922):421-428. doi:10.1038/s41586-022-05030-3. (IF=69.504)

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[19] Fan H, Hong B, Luo Y, et al. The effect of whey protein on viral infection and replication of SARS-CoV-2 and pangolin coronavirus in vitro. Signal Transduct Target Ther. 2020;5(1):275. Published 2020 Nov 24. doi:10.1038/s41392-020-00408-z.(IF=38.104)

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