聯(lián)系電話
參考價(jià): | ¥ 2456 |
訂貨量: | 1 件 |
- 產(chǎn)品型號(hào)
- Yeasen/翌圣生物 品牌
- 生產(chǎn)商 廠商性質(zhì)
- 上海市 所在地
訪問次數(shù):2031更新時(shí)間:2023-02-22 17:22:45
- 聯(lián)系人:
- 曹女士
- 電話:
- 400-6111-883
- 手機(jī):
- 售后:
- 4006-111-883
- 傳真:
- 86-21-34615995
- 地址:
- 上海市浦東新區(qū)天雄路166弄1號(hào)3樓
- 網(wǎng)址:
- www.yeasen.com
掃一掃訪問手機(jī)商鋪
供貨周期 | 現(xiàn)貨 | 貨號(hào) | 12202ES08 |
---|---|---|---|
應(yīng)用領(lǐng)域 | 生物產(chǎn)業(yè),制藥 |
Hieff NGS® Ultima Pro PCR Free DNA Library Prep Kit 全能型DNA建庫(kù)試劑盒(PCR-Free)
產(chǎn)品描述
Hieff NGS® Ultima Pro PCR Free DNA Library Prep Kit全能型DNA建庫(kù)試劑盒(PCR-Free)是針對(duì)Illumina®高通量測(cè)序平臺(tái)專業(yè)開發(fā)設(shè)計(jì)的新一代PCR Free版建庫(kù)試劑盒。本產(chǎn)品采用高質(zhì)量的酶學(xué)組成,在前一代建庫(kù)試劑盒的基礎(chǔ)上,改進(jìn)了DNA片段末端修復(fù)和加A效率,同時(shí)改善接頭連接效率??蓱?yīng)用于常規(guī)動(dòng)植物基因組、微生物基因組、FFPE、cfDNA、ChIP DNA等樣本,助力獲得優(yōu)異的測(cè)序數(shù)據(jù)。
1.適用500 pg-500 ng所有DNA樣本,包含cfDNA、FFPE等
2.文庫(kù)轉(zhuǎn)化率,最高可達(dá)70%以上
3.多樣本驗(yàn)證可獲得優(yōu)異的文庫(kù)與測(cè)序數(shù)據(jù)
4.嚴(yán)格的批次性能與穩(wěn)定性質(zhì)控
產(chǎn)品組分
運(yùn)輸與保存方法
干冰運(yùn)輸。所有組分-20 °C保存,有效期1年。
注意事項(xiàng)
一、關(guān)于操作
1. 為了您的安全和健康,請(qǐng)穿實(shí)驗(yàn)服并戴一次性手套操作。
2. 請(qǐng)于使用前將試劑盒各組分置于室溫解凍。解凍后上下顛倒數(shù)次充分混勻,短暫離心后置于冰上待用。
3. 配制各步驟反應(yīng)液時(shí)推薦使用移液器吹打混勻或輕輕振蕩,劇烈振蕩可能會(huì)造成文庫(kù)產(chǎn)出下降。
4. 為避免樣品交叉污染,推薦使用帶濾芯的槍頭,吸取不同樣品時(shí)請(qǐng)更換槍頭。
5. 推薦在帶熱蓋的PCR儀中進(jìn)行各步驟反應(yīng),使用前應(yīng)預(yù)熱PCR儀至反應(yīng)溫度附近。
6. PCR產(chǎn)物因操作不當(dāng)極容易產(chǎn)生氣溶膠污染,進(jìn)而影響實(shí)驗(yàn)結(jié)果準(zhǔn)確性。推薦將PCR反應(yīng)體系配制區(qū)和PCR產(chǎn)物純化檢測(cè)區(qū)進(jìn)行強(qiáng)制性的物理隔離;使用專用的移液器等設(shè)備;并定時(shí)對(duì)各實(shí)驗(yàn)區(qū)域進(jìn)行清潔(使用0.5%次氯酸鈉或10%漂白劑進(jìn)行擦拭清理),以保證實(shí)驗(yàn)環(huán)境的潔凈度。
7. 本產(chǎn)品僅作科研用途!
二、關(guān)于DNA片段化
1. 本試劑盒中兼容機(jī)械法及酶切法片段化的DNA。
2. 本試劑盒兼容范圍為500 pg - 500 ng Input DNA。應(yīng)盡可能使用A260/A280 = 1.8-2.0的高質(zhì)量Input DNA。表1中列舉了將本試劑盒應(yīng)用于常見應(yīng)用中推薦的Input DNA量。
表1.常見應(yīng)用中推薦Input DNA量
應(yīng)用 | 樣本類型 | 推薦Input DNA量 |
全基因組測(cè)序 | 復(fù)雜基因組 | 50 ng-500 ng |
靶向捕獲測(cè)序 | 復(fù)雜基因組 | 10 ng-500 ng |
全基因組測(cè)序,靶向捕獲測(cè)序 | FFPE DNA | 50 ng-500 ng |
全基因組測(cè)序,靶向捕獲測(cè)序 | cfDNA/ctDNA | ≥500 pg |
全基因組測(cè)序 | 微生物基因組 | ≥1 ng |
全基因組測(cè)序PCR-free測(cè)序 | 高質(zhì)量DNA | ≥50 ng |
【注】:上表為使用高質(zhì)量DNA時(shí)推薦的Input DNA量,當(dāng)Input DNA質(zhì)量較差或需要進(jìn)行片段分選時(shí),應(yīng)適當(dāng)上調(diào)使用量。
3. Input DNA特指投入末端修復(fù)/dA尾添加步驟中的DNA。
4. Input DNA制備過程中帶入的高濃度金屬離子螯合劑或其他鹽,可能會(huì)影響末端修復(fù)/dA尾添加步驟反應(yīng)效率,建議DNA片段化后進(jìn)行磁珠純化或分選。當(dāng)使用機(jī)械法進(jìn)行DNA片段化且產(chǎn)物不進(jìn)行純化或長(zhǎng)度分選而直接建庫(kù)時(shí),請(qǐng)將DNA稀釋在TE Buffer中進(jìn)行片段化,請(qǐng)勿在滅菌超純水中進(jìn)行。當(dāng)使用酶切法進(jìn)行片段化且產(chǎn)物不進(jìn)行純化或長(zhǎng)度分選而直接建庫(kù)時(shí),請(qǐng)確認(rèn)Stop Buffer中不包含過量的金屬離子螯合劑。如條件不滿足,可先將片段化產(chǎn)物純化或長(zhǎng)度分選后溶于TE buffer或滅菌超純水中(≤50 μL),再進(jìn)行文庫(kù)構(gòu)建。
三、關(guān)于接頭連接(Adapter Ligation)
1. 針對(duì)Illumina®測(cè)序平臺(tái),Yeasen提供48種Barcoded Adapters: Hieff NGS® Complete Adapter Kit for Illumina®, Set 1~Set 4 (Cat#12615~Cat#12618);單端 96種 Index Primers: Hieff NGS® 96 Single Index Primers Kit for Illumina®, Set 1~Set 2 (Cat#12611~Cat#12612);雙端384 種UDI Primers: Hieff NGS® Stubby UDI Primer Kit for Illumina® (Cat#12404~Cat#12407)。
2. Adapter的質(zhì)量和使用濃度直接影響連接效率及文庫(kù)產(chǎn)量。Adapter用量過高可能會(huì)產(chǎn)生較多Adapter Dimer;用量較低可能會(huì)影響連接效率及文庫(kù)產(chǎn)量。表2列舉了使用本試劑盒,不同Input DNA量推薦的Adapter使用量。
表2.500 pg-1 μg Input DNA推薦的Adapter使用濃度
Input DNA | Adapter : Input DNA摩爾比 | Input DNA | Adapter : Input DNA摩爾比 |
1 μg | 10:1 | 50 ng | 100:1 |
500 ng | 20:1 | 25 ng | 200:1 |
250 ng | 40:1 | 1 ng | 200:1 |
100 ng | 100:1 | 500 pg | 400:1 |
【注】:Input DNA摩爾數(shù) (pmol)≈ Input DNA質(zhì)量(ng)/ [0.66 × Input DNA平均長(zhǎng)度 (bp)]。
四、關(guān)于磁珠純化與分選 (Bead-based Clean Up and Size Selection)
1. DNA片段長(zhǎng)度分選步驟可選擇在末端修復(fù)/dA尾添加之前,或接頭連接后,或文庫(kù)擴(kuò)增后進(jìn)行。
2. 當(dāng)Input DNA質(zhì)量≥50 ng,您可選擇在接頭連接后分選;如Input DNA質(zhì)量<50 ng,建議您在文庫(kù)擴(kuò)增后進(jìn)行分選。
3. Ligation Enhancer中包含高濃度的PEG,會(huì)對(duì)雙輪磁珠分選產(chǎn)生顯著影響。因此,如在接頭連接后進(jìn)行長(zhǎng)度分選,必須先進(jìn)行純化步驟,再進(jìn)行雙輪分選步驟??;如在末端修復(fù)/dA尾添加之前或文庫(kù)擴(kuò)增后進(jìn)行長(zhǎng)度分選,可直接進(jìn)行雙輪磁珠分選步驟。
4. 磁珠使用前應(yīng)先平衡至室溫,否則會(huì)導(dǎo)致得率下降、分選效果不佳。
5. 磁珠每次使用前都應(yīng)充分振蕩混勻或使用移液器上下吹打充分混勻。
6. 轉(zhuǎn)移上清時(shí),請(qǐng)勿吸取磁珠,即使微量殘留都將影響后續(xù)文庫(kù)質(zhì)量。
7. 磁珠漂洗使用的80%乙醇應(yīng)現(xiàn)用現(xiàn)配,否則將影響回收效率。
8. 進(jìn)行長(zhǎng)度分選時(shí),初始樣品體積應(yīng)盡量≥100 μL,不足時(shí)請(qǐng)用超純水補(bǔ)齊。以防因樣品體積太小導(dǎo)致移液誤差增大。
9. 產(chǎn)物洗脫前應(yīng)將磁珠置于室溫干燥。干燥不充分容易造成無水乙醇?xì)埩粲绊懞罄m(xù)反應(yīng);過分干燥又會(huì)導(dǎo)致磁珠開裂進(jìn)而降低純化得率。通常情況下,室溫干燥3-5 min足以讓磁珠充分干燥。
10. DNA純化或長(zhǎng)度分選產(chǎn)物如需保存,可使用TE Buffer洗脫,產(chǎn)物可于4 °C可保存1-2周,-20 °C可保存1個(gè)月。
五、關(guān)于文庫(kù)質(zhì)檢 (Library Quality Analysis)
1. 通常情況下,構(gòu)建好的文庫(kù)可通過長(zhǎng)度分布檢測(cè)和濃度檢測(cè)來進(jìn)行質(zhì)量評(píng)價(jià)。
2. 文庫(kù)濃度檢測(cè)可使用:基于雙鏈DNA熒光染料的方法,如Qubit®、PicoGreen®等;基于qPCR絕對(duì)定量的方法。
3. 文庫(kù)濃度檢測(cè)不可使用:基于光譜檢測(cè)的方法,如NanoDrop®等。
4. 推薦使用qPCR方法進(jìn)行文庫(kù)濃度檢測(cè):Qubit®、PicoGreen®等基于雙鏈DNA熒光染料的濃度測(cè)定方法時(shí),無法有效區(qū)分單端連接Adapter的產(chǎn)物、兩端均未連接Adapter的產(chǎn)物以及其他不完整雙鏈結(jié)構(gòu)產(chǎn)物;qPCR絕對(duì)定量基于PCR擴(kuò)增原理,僅定量樣品中兩端Adapter完整的文庫(kù)(即可測(cè)序的文庫(kù)),可排除單端或雙端都不連接Adapter的不可測(cè)序文庫(kù)的干擾。
5. 文庫(kù)長(zhǎng)度分布檢測(cè),可通過Agilent Bioanalyzer 2100等基于毛細(xì)管電泳或微控流原理的設(shè)備進(jìn)行檢測(cè)。