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技術原理
細胞周期分為間期與分裂期兩個階段。間期又分為三期:即DNA合成期(G1期)、DNA合成期(S期)與DNA合成后期(G2期)。某些細胞在分裂結束后暫時離開細胞周期,停止細胞分裂,執(zhí)行一定生物學功能(G0期)。由于細胞周期各時相的DNA含量不同,通常正常細胞的G1/ G0期具有二倍體細胞的DNA含量(2N),而G2/ M期具有四倍體細胞的DNA含量(4N),而S期的DNA含量介于二倍體和四倍體之間。 PI可以與DNA結合,其熒光強度直接反映了細胞內DNA含量。因此,通過流式細胞儀PI染色法對細胞內DNA含量進行檢測時,可以將細胞周期各時相區(qū)分為G1/G0期,S期和G2/M期。
PI為插入性核酸熒光染料,能選擇性的嵌入核酸DNA和RNA雙鏈螺旋的堿基之間與之結合,其結合的量與DNA的含量成正比例關系,用流式細胞儀進行分析,就可以得到細胞周期各個階段的DNA分布狀態(tài),從而計算出各個期的百分含量。
實驗方法
Step1:細胞培養(yǎng)
Step2:轉染或藥物處理
Step3:細胞收集
Step4:加周期試劑
Step5:上機檢測
案例展示
在施加藥物后,細胞周期明顯阻滯。
技術總結
1、考慮到進行流式時需要用到對照組細胞設置空白組(用于調節(jié)電壓)和單染組細胞(用于調節(jié)補償),因此要求該組細胞量較其他組多;
2、如發(fā)現細胞密度偏低,細胞量較少,則適當增加離心時間。收集細胞時,應該連同上清一起收集,同時胰酶消化時間不宜過長,否則容易引起假陽性;
3、檢測細胞經過轉染等處理后可能會帶有自發(fā)熒光,應注意選擇試劑盒的顏色通道 如:帶綠色熒光時,應選擇紅光試劑盒;
4、細胞鋪板應選擇細胞狀態(tài)良好的時候進行,且避免因反復吹打形成機械損傷,而出現細胞碎片過多。
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