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捷克PSI FluorPen FP110手持式葉綠素?zé)晒鈨x

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更新時間:2021-04-27 14:18:07瀏覽次數(shù):639

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產(chǎn)品簡介

產(chǎn)地類別 進口 價格區(qū)間 面議
應(yīng)用領(lǐng)域 環(huán)保,食品,生物產(chǎn)業(yè),農(nóng)業(yè),電子
捷克PSI FluorPen FP110手持式葉綠素?zé)晒鈨x手持式葉綠素?zé)晒鈨x用于實驗室、溫室和野外快速測量植物葉綠素?zé)晒鈪?shù),具有便攜性強、精確度高、性價比高等特點;雙鍵操作,具圖形顯示屏,內(nèi)置鋰電和數(shù)據(jù)存儲,廣泛應(yīng)用于研究植物的光合作用、脅迫監(jiān)測、除草劑檢測或突變體篩選

詳細介紹

捷克PSI FluorPen FP110手持式葉綠素?zé)晒鈨x

FluorPen FP110手持式葉綠素?zé)晒鈨x用于實驗室、溫室和野外快速測量植物葉綠素?zé)晒鈪?shù),具有便攜性強、精確度高、性價比高等特點;雙鍵操作,具圖形顯示屏,內(nèi)置鋰電和數(shù)據(jù)存儲,廣泛應(yīng)用于研究植物的光合作用、脅迫監(jiān)測、除草劑檢測或突變體篩選,還可用于生態(tài)毒理的生物檢測,如通過不同植物對土壤或水質(zhì)污染的葉綠素?zé)晒忭憫?yīng),找出敏感植物作為生物傳感器用于生物檢測。FP110配備多種葉夾型號,用于不同的樣品與研究。FluorPen FP110手持式葉綠素?zé)晒鈨x用于實驗室、溫室和野外快速測量植物葉綠素?zé)晒鈪?shù),具有便攜性強、精確度高、性價比高等特點;雙鍵操作,具圖形顯示屏,內(nèi)置鋰電和數(shù)據(jù)存儲,廣泛應(yīng)用于研究植物的光合作用、脅迫監(jiān)測、除草劑檢測或突變體篩選,還可用于生態(tài)毒理的生物檢測,如通過不同植物對土壤或水質(zhì)污染的葉綠素?zé)晒忭憫?yīng),找出敏感植物作為生物傳感器用于生物檢測。FP110配備多種葉夾型號,用于不同的樣品與研究。

 

 

應(yīng)用領(lǐng)域

   適用于光合作用研究和教學(xué),植物及分子生物學(xué)研究,農(nóng)業(yè)、林業(yè),生物技術(shù)領(lǐng)域等。研究內(nèi) 容涉及光合活性、脅迫響應(yīng)、農(nóng)藥藥效測試、突變篩選等。

·         植物光合特性研究

·         光合突變體篩選與表型研究

·         生物和非生物脅迫的檢測

·         植物抗脅迫能力或者易感性研究

·         農(nóng)業(yè)和林業(yè)育種、病害檢測、長勢與產(chǎn)量評估

·         除草劑檢測

  •  教學(xué)

 

功能特點:

§   結(jié)構(gòu)緊湊、便攜性強,LED光源、檢測器、控制單元集成于僅手機大小的儀器內(nèi),重量僅188g

§   功能強大,是葉綠素?zé)晒饧夹g(shù)的結(jié)晶產(chǎn)品,具備了大型熒光儀的所有功能,可以測量所有葉綠素?zé)晒鈪?shù)

§   內(nèi)置了所有通用葉綠素?zé)晒夥治鰧嶒灣绦?,包?/span>2套熒光淬滅分析程序、3套光響應(yīng)曲線程序、OJIP快速熒光動力學(xué)曲線等

§   高時間分辨率,可達10萬次每秒,自動繪出OJIP曲線并給出26OJIP–test參數(shù)

 

§   FluorPen專業(yè)軟件功能強大,可下載、展示葉綠素?zé)晒鈪?shù)圖表,也可以通過軟件直接控制儀器進行測量

§   具備無人值守自動監(jiān)測功能

§   內(nèi)置藍牙與USB雙通訊模塊,GPS模塊,輸出帶時間戳和地理位置的葉綠素?zé)晒鈪?shù)圖表

§   配備多種葉夾型號:固定葉夾式(適用于大批量樣品快速測量)、分離葉夾式(適用于暗適應(yīng)測量)、開放葉夾式(適用于溫室、培養(yǎng)箱進行監(jiān)測)、用戶定制式等

§   可選配野外自動監(jiān)測式熒光儀,防水防塵設(shè)計

  

    

 

 

測量程序與功能

·         Ft:瞬時葉綠素?zé)晒?font face="Times New Roman">,暗適應(yīng)完成后FtF0

·         QY:量子產(chǎn)額,表示光系統(tǒng)II 的效率,等于Fv/Fm(暗適應(yīng)狀態(tài))ΦPSII (光適應(yīng)狀態(tài))

·         OJIP:快速熒光動力學(xué)曲線,用于研究植物暗適應(yīng)后的快速熒光動態(tài)變化

·         NPQ:熒光淬滅動力學(xué)曲線,用于研究植物從暗適應(yīng)到光適應(yīng)狀態(tài)的熒光淬滅變化過程。

·         LC:光響應(yīng)曲線,用于研究植物對不同光強的熒光淬滅反應(yīng)。

·         PAR:光合有效輻射,測量環(huán)境中植物生長可以利用的400-700nm實際光強(限PAR型號)。

技術(shù)參數(shù)

  • 測量參數(shù)包括F0、Ft、FmFm’、QY、QY_Ln、QY_Dn、NPQ、Qp、Rfd、PAR(限PAR型號)Area、MoSm、PIABS/RC50多個葉綠素?zé)晒鈪?shù),及3種給光程序的光響應(yīng)曲線、2種熒光淬滅曲線、OJIP曲線等
  • OJIP–test時間分辨率為10μs(每秒10萬次),給出OJIP曲線和26個參數(shù),包括F0Fj、Fi、Fm、Fv、Vj、Vi、Fm/F0、Fv/F0Fv/Fm、MoArea、Fix Area、Sm、Ss、N、Phi_PoPsi_o、Phi_Eo、Phi–DoPhi_Pav、PI_Abs、ABS/RCTRo/RC、ETo/RCDIo/RC
  • 測量程序:Ft、QY、OJIP、NPQ1、NPQ2、LC1、LC2、LC3、PAR(限PAR型號)、Multi無人值守自動監(jiān)測
  • 葉夾類型:FP110/S固定葉夾式、FP110/D分離葉夾式、FP110/P開放葉夾式、FP110/X用戶定制式
    • PAR傳感器(限PAR型號)80o入射角余弦校正,讀數(shù)單位μmol(photons)/m2.s,可顯示讀數(shù),檢測范圍400-700 nm
    • 測量光:每測量脈沖00.09μmol(photons)/m2.s,0-100%可調(diào)
    • 光化學(xué)光:01000μmol(photons)/m2.s0-100%可調(diào)
    • 飽和光:03000μmol(photons)/m2.s,0-100%可調(diào)
    • 光源:標(biāo)準(zhǔn)配置藍光470nm,可根據(jù)需求配備不同波長的LED光源
    • 檢測器:PIN光電二極管,667–750nm濾波器
    • 尺寸大?。撼銛y,手機大小,134×65×33mm,重量僅188g
    • 存貯:容量16Mb,可存儲149000數(shù)據(jù)點

           

 

    • 顯示與操作:圖形化顯示,雙鍵操作,待機8分鐘自動關(guān)閉
    • 供電:可充電鋰電池,USB充電,連續(xù)工作48小時,低電報警
    • 工作條件:0–<?xml:namespace prefix = "st1" />55℃,095%相對濕度(無凝結(jié)水)
    • 存貯條件:-1060℃,095%相對濕度(無凝結(jié)水)
    • 通訊方式:藍牙+USB雙通訊模式
    • GPS模塊:內(nèi)置
    • 軟件:FluorPen1.1專用軟件,用于數(shù)據(jù)下載、分析和圖表顯示,輸出Excel數(shù)據(jù)文件及熒光動力學(xué)曲線圖,適用于Windows 7及更高操作系統(tǒng)

操作軟件與實驗結(jié)果

     

          

     

     

    產(chǎn)地:捷克

    應(yīng)用案例

     

            

              地衣Peltigera aphthosa不同結(jié)構(gòu)的葉綠素?zé)晒夥治觯?/span>OJIP快速熒光動力學(xué)曲線、Fv/Fm最大光化學(xué)效率、NPQ非光化學(xué)熒光淬滅(Chekanov K, et al. 2017

               

           

     

     

             牡丹不同生長階段的葉綠素?zé)晒夥治觯?font face="Times New Roman">Oyungerel S, et al. 2017

     

     

    參考文獻

    1. JA Pérez-Romeroet al. 2018. Atmospheric CO2 enrichment effect on the Cu-tolerance of the C4 cordgrass Spartina densiflora. Journal of Plant Physiology 220: 155-166
    2. SK Yadavet al. 2018. Physiological and Biochemical Basis of Extended and Sudden Heat Stress Tolerance in Maize. Proceedings of the National Academy of Sciences 88(1): 249-263
    3. D Balfagónet al. 2018. Involvement of ascorbate peroxidase and heat shock proteins on citrus tolerance to combined conditions of drought and high temperatures. Plant Physiology and Biochemistry 127: 194-199
    4. JI Vílchezet al. 2018. Protection of Pepper Plants from Drought by Microbacterium sp. 3J1 by Modulation of the Plant's Glutamine and α-ketoglutarate Content: A Comparative Metabolomics Approach. Front. Microbiol. 9: 284
    5. MC Sorrentino, et al. 2018. Performance of three cardoon c*rs in an industrial heavy metal-contaminated soil: Effects on morphology, cytology and photosynthesis. Journal of Hazardous Materials 351: 131-137
    6. E Niewiadomska, et al. 2018. Lack of tocopherols influences the PSII antenna and the functioning of photosystems under low light. Journal of Plant Physiology 223: 57-64
    7. S Singh, et al. 2018. Cadmium toxicity and its amelioration by kinetin in tomato seedlings vis-à-vis ascorbate-glutathione cycle. Journal of Photochemistry and Photobiology B: Biology 178: 76-84
    8. EL Fry, et al. 2018. Drought neutralises plant–soil feedback of two mesic grassland forbs. Oecologia 186(4): 1113–-125
    9. B Duarteet al. 2017. Disentangling the photochemical salinity tolerance in Aster tripolium L.: connecting biophysical traits with changes in fatty acid composition. Plant Biology 19(2): 239-248
    10. OO Ajigboyeet al. 2017. Altered gene expression by sedaxane increases PSII efficiency, photosynthesis and growth and improves tolerance to drought in wheat seedlings. Pesticide Biochemistry and Physiology 137: 49-61

    附:OJIP參數(shù)及計算公式

    Bckg = background

    Fo: = F50μs; fluorescence intensity at 50 μs

    Fj: = fluorescence intensity at j-step (at 2 ms)

    Fi: = fluorescence intensity at i-step (at 60 ms)

    Fm: = maximal fluorescence intensity

    Fv: = Fm - Fo (maximal variable fluorescence)

    Vj = (Fj - Fo) / (Fm - Fo)

    Fm / Fo = Fm / Fo

    Fv / Fo = Fv / Fo

    Fv / Fm = Fv / Fm

    Mo = TRo / RC - ETo / RC

    Area = area between fluorescence curve and Fm

    Sm = area / Fm - Fo (multiple turn-over)

    Ss = the smallest Sm turn-over (single turn-over)

    N = Sm . Mo . (I / Vj) turn-over number QA

    Phi_Po = (I - Fo) / Fm (or Fv / Fm)

    Phi_o = I - Vj

    Phi_Eo = (I - Fo / Fm) . Phi_o

    Phi_Do = 1 - Phi_Po - (Fo / Fm)

    Phi_Pav = Phi_Po - (Sm / tFM); tFM = time to reach Fm (in ms)

    ABS / RC = Mo . (I / Vj) . (I / Phi_Po)

    TRo / RC = Mo . (I / Vj)

    ETo / RC = Mo . (I / Vj) . Phi_o)

    DIo / RC = (ABS / RC) - (TRo / RC)

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