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一、Small RNA 的概念
Small RNA是長(zhǎng)度小于200nt的一類非編碼RNA,承擔(dān)著關(guān)鍵性的調(diào)控功能,主要包括三類,分別是miRNA、piRNA以及 siRNA,其中以miRNA研究最為廣泛。Small RNA的5'和3'末端分別有自由的磷酸基和羥基,正是基于這一結(jié)構(gòu)特點(diǎn),Small RNA測(cè)序采用5'、3'兩端連接接頭法進(jìn)行Small RNA文庫(kù)構(gòu)建。
二、Small RNA建庫(kù)的原理
1.3'接頭連接
將RNA和3'接頭置于70℃條件下進(jìn)行變性,打開(kāi)RNA及3'接頭可能存在的二級(jí)結(jié)構(gòu)。利用酶將 Small RNA的3'羥基和3'通用接頭進(jìn)行連接。
2.多余3'接頭封閉
為了防止多余的3'接頭與5'接頭連接產(chǎn)生接頭二聚體,在5'接頭連接之前,需要將多余的3'接頭進(jìn)行封閉。封閉是通過(guò)加入RT Primer與多余的3'接頭反向互補(bǔ)形成雙鏈結(jié)構(gòu),從而有效阻止其與5'接頭連接,達(dá)到減少接頭二聚體的目的。
3.5'接頭連接
5'接頭連接是基于Small RNA的5'端含有磷酸基團(tuán),利用酶將5'接頭與Small RNA進(jìn)行連接。如需要測(cè)試的Small RNA 5'端不含磷酸基團(tuán),則連接不上5'接頭。5'接頭為RNA接頭,自身可能形成二級(jí)結(jié)構(gòu),使用前需要將5'接頭的二級(jí)結(jié)構(gòu)打開(kāi)。
4.cDNA合成
利用3'接頭封閉時(shí)加入的RT Primer作為引物進(jìn)行逆轉(zhuǎn)錄合成cDNA。
5.PCR富集
使用帶有P5、P7的引物進(jìn)行文庫(kù)富集。
6.文庫(kù)分選
擴(kuò)增后的文庫(kù)會(huì)有擴(kuò)增引物殘留及rRNA污染。純化后的文庫(kù)推薦使用PAGE膠進(jìn)行分選,可直觀獲得目的條帶。也可以使用雙輪磁珠分選,但分選范圍較廣,得到的Small RNA文庫(kù)純度較低。分選后的文庫(kù)miRNA在147bp處左右。
三、Small RNA建庫(kù)的操作流程
·Small RNA 建庫(kù)
Vazyme 針對(duì) lllumina 高通量測(cè)序平臺(tái)定向開(kāi)發(fā)的Small RNA文庫(kù)構(gòu)建專用試劑盒-VAHTS Small RNA Library Prep Kit for lllumina V2 (Vazyme #NR811)。
· Vazyme #NR811 產(chǎn)品優(yōu)勢(shì)
1.文庫(kù)豐度高:接頭污染少,有效文庫(kù)比例高,miRNA比例高、覆蓋種類多,文庫(kù)數(shù)據(jù)質(zhì)量可靠;
2.樣本兼容范圍廣:動(dòng)、植物細(xì)胞/組織總RNA,分離純化的Small RNA,以及其他類型總RNA(如外泌體總RNA)均可作為起始模板;起始模板投入低至10ng總RNA;
3.多種純化方式可選:NR811中包含文庫(kù)構(gòu)建所需的所有組分,提供磁珠分選和PAGE膠分離兩種文庫(kù)純化方式,可根據(jù)起始文庫(kù)質(zhì)量任意選擇。
自備材料
1.Small RNA Index Primer
VAHTS Small RNA Index Primer Kit for Illumina (Vazyme #N813-816)。
2.RNA質(zhì)控
Agilent RNA 6000 Pico Kit (Agilent #5067-1513)。
3.文庫(kù)質(zhì)控
Agilent DNA 1000 kit (Agilent #5067-1504)、Agilent High Sensitive Kit (Agilent #5067-4626)。
4.文庫(kù)純化
VAHTS DNA Clean Beads (Vazyme #N411)。
5.文庫(kù)分選
5.1PAGE膠分選:
6% Novex TBE PAGE gel 1.0 mM 10-well (Life Technologies #EC6265BOX)、5 x TBE、Ultra GelRed Nucleic Acid Stain (Vazyme #GR501)或 SYBR Gold Nucleic Acid Gel Stain(Life Technologies #S11494)、3M醋酸鈉(pH 5.2)、無(wú)水乙醇、新鮮配制的80%乙醇。
5.2磁珠分選:
VAHTS DNA Clean Beads(Vazyme #N411)、新鮮配制的80%乙醇。
6.其他材料
Nucleas-free ddH2O、RNase-free PCR管、低吸附EP管(Eppendorf#022431021); Agilent 2100 Bioanalyzer或其他等效產(chǎn)品、PCR儀、磁力架、-80℃冰箱、水浴鍋、離心機(jī)。
·注意事項(xiàng)
1.試劑盒各組分應(yīng)于標(biāo)注條件下保存:
1.15'接頭RL5 Adaptor為RNA接頭,請(qǐng)置于-85~-65℃保存。
1.2 試劑盒中的各酶類組分,請(qǐng)置于-30~-15℃保存。使用前混勻并進(jìn)行短暫離心,避免粘附于管壁及管蓋,造成損失;使用時(shí)應(yīng)置于冰上,使用后及時(shí)按條件保存,否則會(huì)導(dǎo)致酶活降低。
1.3 RL3 Buffer V2比較粘稠,解凍混勻后請(qǐng)短暫離心收集至管底,避免液體粘附于管蓋和管壁,導(dǎo)致試劑損失。
2.RNA樣品質(zhì)控:
為保證建庫(kù)質(zhì)量,實(shí)驗(yàn)開(kāi)始前請(qǐng)對(duì)RNA樣品進(jìn)行質(zhì)控,RNA樣品總量、純度和完整性應(yīng)滿足以下條件:
2.1以總RNA為起始模板,請(qǐng)使用沉淀法(如trizol法)或者Small RNA專用提取試劑盒提取RNA樣品,確保所使用的提取方法不會(huì)損失 Small RNA。
2.2總RNA模板的起始投入量應(yīng)≥10ng,若起始投入量過(guò)低,不能確保文庫(kù)構(gòu)建成功。
2.3 OD260/280比值介于1.8-2.2之間,使用Bioanalyzer進(jìn)行RNA完整性檢測(cè),RIN值27;使用瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè),則28S:18S≥1.5,且無(wú)蛋白質(zhì)和基因組污染。
3.操作過(guò)程注意事項(xiàng):
3.1實(shí)驗(yàn)過(guò)程中請(qǐng)使用RNase-free的槍頭、EP管、PCR管,吸取不同樣品時(shí)請(qǐng)更換槍頭。
3.2 請(qǐng)佩戴手套、口罩操作,接觸RNase-free空間外設(shè)備或其他工作區(qū)間后,請(qǐng)更換手套。
3.3 所有的試劑使用后請(qǐng)立即蓋上管蓋,避免污染。
3.4實(shí)驗(yàn)過(guò)程中如需暫停,請(qǐng)嚴(yán)格按照使用方法中注明的可停放點(diǎn)將樣品置于合適的溫度下保存,不正確的停放可能會(huì)降低建庫(kù)成功率。
實(shí)驗(yàn)流程
1.3'接頭連接
將RL3 Adaptor、RL3 Buffer V2、RL3 Enzyme mix V2取出,解凍并混勻、短暫離心收集至管底,置于冰上備用,以下所有步驟均在冰上操作。
不同起始量RNA投入,所需接頭量不同,接頭量不足產(chǎn)出不夠,接頭過(guò)量則接頭二聚體殘留較多。推薦按照下表對(duì)接頭進(jìn)行稀釋、如血清、血漿、外泌體RNA提取產(chǎn)物低于Qubit測(cè)定下限,則按照最大體積6μl投入,推薦按照10ng總RNA接頭稀釋倍數(shù)進(jìn)行稀釋。
1.1 模板與接頭變性
將RNA底物自身以及RNA底物之間可能存在的二級(jí)結(jié)構(gòu)打開(kāi)。根據(jù)模版RNA起始投入量稀釋 RL3 Adaptor,在RNase-free的PCR管中按照下表配制反應(yīng)體系。
1.2將PCR管置于提前預(yù)熱至70℃的PCR儀中反應(yīng)2min,反應(yīng)結(jié)束后立即取出置于冰上2 min。
1.3向1.2的反應(yīng)管中依次加入如下組分:
1.4使用移液器吹打10-15次充分混勻,短暫離心收集反應(yīng)液至管底。將反應(yīng)管置于熱蓋的PCR儀中運(yùn)行如下程序:
2.多余3'接頭封閉
將RT Primer取出,解凍并混勻,短暫離心收集至管底,置于冰上備用,以下所有步驟均在冰上操作。
2.1 根據(jù)模版RNA起始投入量,參照表格稀釋RT Primer,再按照下表配制反應(yīng)體系。
2.2 使用移液器吹打10~15次混勻,短暫離心收集至管底。置于熱蓋的PCR儀中運(yùn)行如下程序:
3.5'接頭連接
將5'接頭RL5 Adaptor、RL5 Buffer和RL5 Enzyme mix取出,解凍并混勻、短暫離心收集至管底,置于冰上備用,以下所有步驟均在冰上操作。
3.1 5'接頭變性
RL5 Adaptor 自身可能形成二級(jí)結(jié)構(gòu),使用前需變性打開(kāi)二級(jí)結(jié)構(gòu)。根據(jù)模版RNA起始投入量,參照表格稀釋RL5 Adaptor,將稀釋好的RL5 Adaptor置于提前預(yù)熱至70℃的PCR儀中反應(yīng)2min,反應(yīng)結(jié)束后立即取出置于冰上。
3.2 按照下表配制5'接頭連接反應(yīng)體系:
3.3 使用移液器吹打10~15次充分混勻,短暫離心收集反應(yīng)液至管底。將反應(yīng)管置于熱蓋的PCR儀中運(yùn)行如下程序:
4. cDNA合成
將RT Buffer和 RT Enzyme mix V2取出,解凍并混勻、短暫離心收集至管底,置于冰上備用。
4.1 按照下表配制逆轉(zhuǎn)錄反應(yīng)體系:
4.2 使用移液器吹打10~15次充分混勻,短暫離心收集反應(yīng)液至管底。將反應(yīng)管置于熱蓋的PCR儀中運(yùn)行如下程序:
5.文庫(kù)富集
將Universal Primer、Index Primer和 Amplification mix 3取出,解凍混勻后置于冰上備用。5.1 按照下表配制反應(yīng)體系:
5.2將上述反應(yīng)液混勻,短暫離心收集至管底。將反應(yīng)管置于熱蓋的PCR儀中運(yùn)行如下反應(yīng)程序:
6.PCR產(chǎn)物純化
6.1 將VAHTS DNA Clean Beads提前30 min從2~8℃取出,靜置使其平衡至室溫。
6.2 顛倒或渦旋振蕩使VAHTS DNA Clean Beads 充分混勻,吸取180μl(1.8x)加入到PCR產(chǎn)物中,使用移液器輕輕吹打10次充分混勻。
6.3 室溫孵育10min,使DNA結(jié)合到磁珠上。
6.4 將樣品置于磁力架上,待溶液澄清后(約10min),小心移除上清。
6.5 保持樣品始終處于磁力架上,加入200μl新鮮配制的80%乙醇漂洗磁珠,室溫孵育30 sec,小心移除上清。
6.6 重復(fù)6.5一次。
6.7 保持樣品始終處于磁力架上,室溫下開(kāi)蓋干燥磁珠約5min。
加入80%乙醇時(shí)不要吹散磁珠。
最后移除上清時(shí)需使用10μl移液器將殘留液體吸干凈,避免磁珠過(guò)分干燥(龜裂)而降低回收效率。
6.8 將樣品從磁力架上取出,加入30μl Nuclease-free ddH2O,使用移液器輕輕吹打充分混勻,室溫靜置2 min后置于磁力架上,待溶液澄清后(約5min),小心吸取28μl上清至一個(gè)新的Nuclease-free PCR管中。
洗脫產(chǎn)物可在-30~-15℃暫存一周。
6.9 Agilent 2100 Bioanalyzer 檢測(cè)文庫(kù):取1μl純化后的PCR產(chǎn)物用 Agilent DNA 1000 chip分析,由于2100遷移率的影響,最終文庫(kù)的主峰分布可能存在約6-8bp偏差,如下圖所示:miRNA文庫(kù)的峰在143-147 bp處,piRNA文庫(kù)的峰在153-156bp處。
注:A圖和B圖分別為1μg、100ng小鼠肝臟總RNA起始的Small RNA文庫(kù),147 bp處的主峰為miRNA;C圖為1μg小鼠腎臟總RNA起始的Small RNA文庫(kù),147 bp處的主峰為miRNA,153 bp處的主峰為piRNA。
7.文庫(kù)分選
根據(jù)6.9步驟中文庫(kù)質(zhì)控的結(jié)果選擇文庫(kù)分選純化方式,如2100圖顯示120 bp處有較多接頭二聚體、70-80 bp處有較多擴(kuò)增引物殘留以及160bp和190 bp處有明顯的rRNA,則建議選擇PAGE膠分離;如接頭二聚體、擴(kuò)增引物殘留以及rRNA較少則可以選擇磁珠進(jìn)行文庫(kù)分選。為確保最終有效文庫(kù)的比例,建議使用PAGE膠進(jìn)行文庫(kù)分選。方案A:6%非變性PAGE膠分選文庫(kù)
(1)將6%10孔非變性PAGE膠裝置于電泳槽中,向其中加入適量1xTBE電泳緩沖液。
(2)向純化的PCR產(chǎn)物中加入5μl6xLoading Buffer 混勻后離心收集至管底。
(3)取5μl pBR322/Mspl digest DNA Marker緩慢加入PAGE膠樣孔中。
(4)將混有Loading Buffer的PCR產(chǎn)物緩慢加入PAGE膠樣孔中,每個(gè)樣品上兩個(gè)樣孔,每孔15μl。
(5)上樣完成后,120-150V電壓電泳約1h,不同的電泳裝置電泳遷移速率可能不一致,所需電泳時(shí)間有差異,待樣孔中的Loading Buffer藍(lán)色指示劑全部跑出膠板后約3-5min方可停止電泳。
(6)將PAGE膠從電泳裝置中取出,將PAGE膠從膠板上剝下。用Gel-red核酸染料染色10 min,在凝膠成像儀中進(jìn)行觀察,如下圖所示,大約140bp和150 bp處的條帶分別對(duì)應(yīng)于miRNA文庫(kù)和piRNA文庫(kù)的條帶。
(7)用刀片將對(duì)應(yīng)的條帶割下放于事先準(zhǔn)備好的500μl低吸附EP管中(管底已用酒精燈燒過(guò)的1ml注射器針頭戳了數(shù)個(gè)小洞),將500 μl EP管套到1.5ml低吸附EP管中,12,000 rpm(13,800xg)離心2min碾碎膠條。膠條的碾碎程度取決于500μl EP管底部小洞的孔徑,所以只需使用注射器針頭戳穿即可。
(8)離心完成后棄掉500μl EP管,向裝有PAGE膠碎片的1.5ml EP管中加入250 μl GEBuffer,于50℃水浴鍋中溫育1-2h。
(9)將步驟8的EP管于離心機(jī)中12,000 rpm(13,800xg)離心2min,將蒸發(fā)到管壁的液體收集至管底。
(10)將步驟9的上清轉(zhuǎn)移至離心過(guò)濾柱 Filtration Column中12,000 rpm(13,800xg)離心2 min 收集液體,棄去離心柱,將液體轉(zhuǎn)移至新的1.5ml低吸附EP管中。
(11)向步驟10的上清中分別依次加入5μl Co-precipitator,30 μl 3M醋酸鈉(pH 5.2)和1ml無(wú)水乙醇,振蕩混勻后于-80℃沉淀1h。
(12)取出-80℃沉淀產(chǎn)物,于預(yù)冷至4℃的冷凍離心機(jī)中12,000 rpm(13,800xg),離心30 min。
(13)小心移除上清,注意切勿吸取到白色沉淀。向EP管中加入1ml新鮮配制的80%乙醇,于預(yù)冷至4℃的冷凍離心機(jī)中,12,000 rpm(13,800xg)離心10min。
(14)小心移除上清,注意切勿吸取到白色沉淀。短暫離心將管壁上殘留的液體收集至管底,小心移除殘留液體,室溫開(kāi)蓋干燥約10min。
(15)待步驟14產(chǎn)物中殘留的酒精全部揮發(fā),加入15μl Nuclease-free ddH2O溶解沉淀。
(16)2100檢測(cè)分選純化的文庫(kù):取1μl分選純化的產(chǎn)物用Agilent high sensitive chip分析,良好的文庫(kù)應(yīng)該如下圖所示,對(duì)應(yīng)的miRNA文庫(kù)條帶在147-149bp處。
方案B:雙輪磁珠分選文庫(kù)
(1)將VAHTS DNA Clean Beads提前30 min從2~8℃取出,靜置使其溫度平衡至室溫。
(2)顛倒或渦旋振蕩使VAHTS DNA Clean Beads充分混勻,取25μl純化的PCR產(chǎn)物于200 μl PCR管中吸取32.5μl 磁珠(1.3x)加入到PCR產(chǎn)物中,使用移液器輕輕吹打10次充分混勻。
( 3)室溫孵育5min,使DNA結(jié)合到磁珠上。
(4)將樣品置于磁力架上,待溶液澄清后(約5min),小心移取上清至新的Nuclease-free PCR管中。
(5)向步驟4的產(chǎn)物中加入22.5μl磁珠(0.9x),使用移液器輕輕吹打10次充分混勻。(6)室溫孵育5min,使DNA結(jié)合到磁珠上。
(7)將樣品置于磁力架上,待溶液澄清后(約5min),小心棄去上清。
(8)保持樣品始終處于磁力架上,加入200μl新鮮配制的80%乙醇漂洗磁珠,室溫下孵育30sec,小心移除上清。
(9)重復(fù)步驟8一次。
(10)保持樣品始終處于磁力架上,室溫下開(kāi)蓋干燥磁珠約5min。加入80%乙醇時(shí)不要吹散磁珠;最后移除上清時(shí)需要使用10μl移液器將殘留液體吸干凈;應(yīng)避免磁珠過(guò)分干燥(龜裂)而降低回收效率。
(11)將樣品從磁力架上取出,加入17.5 μl Nuclease-free ddH2O,使用移液器輕輕吹10次打充分混勻,室溫靜置2 min后置于磁力架上,待溶液澄清后(約5min),小心吸取15μl上清至一個(gè)新的Nuclease-free PCR管中。
(12)2100檢測(cè)分選純化的文庫(kù):取1μl分選純化的產(chǎn)物用Agilent DNA 1000 chip 或Agilent high sensitive chip分析,良好的文庫(kù)應(yīng)該如圖所示,對(duì)應(yīng)的miRNA文庫(kù)條帶在147-149 bp處。
四、Small RNA建庫(kù)的常見(jiàn)FAQ
RT primer 能否在cDNA合成步驟添加?
不能。3'接頭連接完成后加入的RT primer與多余3'接頭反向互補(bǔ)形成雙鏈結(jié)構(gòu),可以有效阻止5'接頭與3'接頭連接,從而減少接頭二聚體的形成;另外,RT primer與已連上3'接頭的RNA底物方向互補(bǔ)可作為逆轉(zhuǎn)錄步驟的引物,因此RT primer必須在3'接頭連接完成之后添加。
·除常規(guī)的動(dòng)植物總RNA外,其他類型的總RNA是否可以作為起始模板進(jìn)行文庫(kù)構(gòu)建?
除動(dòng)、植物總RNA以及分離純化的Small RNA外,Vazyme #NR811可以兼容其他類型的總RNA,比如外泌體總RNA作為起始模板。下圖為以HeLa細(xì)胞培養(yǎng)物上清的外泌體總RNA為模板構(gòu)建的miRNA文庫(kù)(起始模板投入80ng)。
安培生物致力成為推動(dòng)生命科學(xué)進(jìn)步值得信賴的合作者
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