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禽腺病毒 C 種 4 型(FADV-C-4) 核酸檢測試劑盒(熒光 PCR 法)說明書

閱讀:410      發(fā)布時(shí)間:2024-10-14
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禽腺病毒 C 種 4 型(FADV-C-4) 核酸檢測試劑盒(熒光 PCR 法)

【產(chǎn)品名稱】

商品名稱:禽腺病毒 C 種 4 型(FADV-C-4)核酸檢測試劑盒(熒光 PCR 法) Name :Avian adenovirus C type 4 Detection Kit (Real-Time PCR Method)

【包裝規(guī)格】25T/盒、50T/盒

【預(yù)期用途】

禽腺病毒 C 種 4 型(Avian adenovirus C type 4 , FADV-C-4)屬于腺病毒科禽腺病毒屬,為雙鏈 DNA 病毒,分為 3 個(gè)群。自 2013 年,國內(nèi)雞群由禽腺病毒(FADV)引起的包涵體肝炎、心包積液病例逐漸增多[1]。而到 2015 年,高致病性血清4型 FADV 引起的肝炎-心包積綜合癥已在國內(nèi)雞群爆發(fā),對(duì)養(yǎng)禽業(yè)的發(fā)展構(gòu)成嚴(yán)重威脅[2-3]。

本試劑盒適用于檢測的禽類動(dòng)物肺、脾、腦等組織、呼吸道分泌物、全血等標(biāo)本中禽腺病毒 C 種 4 型 DNA, 適用于禽腺病毒 C 種 4 型感染的輔助診斷。

【檢驗(yàn)原理】

本試劑盒用一對(duì)禽腺病毒 C 種 4 型特異性引物,結(jié)合一條特異性熒光探針,用一步法熒光PCR 技術(shù)對(duì)禽腺病毒 C 種 4 型病毒 DNA 進(jìn)行體外擴(kuò)增檢測,用于臨床上對(duì)可疑感染者的病原學(xué)診斷。

【試劑組成】

包裝規(guī)格25T/盒50T/盒

FADV-C-4 反應(yīng)液500μL×1 管500μL×2 管

酶液25μL×1 管50μL×1 管

FADV-C-4 陽性質(zhì)控品50μL ×1 管50μL ×1 管

陰性質(zhì)控品250μL ×1 管250μL ×1 管

注:

1)不同批號(hào)試劑不能混用。

2)試劑盒內(nèi)各試劑組份足夠包裝規(guī)格所標(biāo)示的檢測次數(shù)。

【儲(chǔ)存條件及有效期】

-20℃±5℃,避光保存、運(yùn)輸、反復(fù)凍融次數(shù)不超過 5 次,有效期 12 個(gè)月。

【適用儀器】

ABI 、安捷倫 MX3000P/3005P、LightCycler、Bio-Rad、Eppendorf 等系列熒光定量 PCR 檢測儀。

【標(biāo)本采集】

病死或撲殺禽,取肺、脾、腦等組織;待檢活禽,用棉拭子取呼吸道分泌物,放于 1mL50%甘油生理鹽水中;用注射器取血 5mL 至 EDTA-2Na 抗凝管。

【保存和運(yùn)輸】

上述標(biāo)本短期內(nèi)可保存于-20℃,長期保存可置-70℃,但不能超過 6 個(gè)月,標(biāo)本運(yùn)送應(yīng)采用 2~8℃冰袋運(yùn)輸, 嚴(yán)禁反復(fù)凍融。

【使用方法】

1.樣品處理(樣本處理區(qū))

1.1樣本前處理

每份組織分別從 3 個(gè)不同的位置稱取樣品約 1g,手術(shù)剪剪碎混勻后取 0.5g 于研磨器中研磨,加入 1.5mL 生理鹽水后繼續(xù)研磨,待勻漿后轉(zhuǎn)至 1.5mL 滅菌離心管中,8000rpm 離心 2min,取上清液 100μL 于 1.5mL 滅菌離心管中;棉拭子直接取 100μL 于 1.5mL 滅菌離心管中;全血樣品待血凝后取血清 100μL,置于 1.5mL 離心管中。 

1.2核酸提取

推薦采用優(yōu)利科(上海)生命科學(xué)有限公司生產(chǎn)的核酸提取或純化試劑(磁珠法或離心柱法)進(jìn)行核酸提取,請(qǐng)按    照試劑說明書進(jìn)行操作。

2.試劑配制(試劑準(zhǔn)備區(qū))

根據(jù)待檢測樣本總數(shù),設(shè)所需要的 PCR 反應(yīng)管管數(shù)為 N(N=樣本數(shù)+1 管陰性對(duì)照+1 管陽性對(duì)照;反應(yīng)管數(shù)每滿 10 份,多配制 1 份),每測試反應(yīng)體系配制如下表:

試劑NDV 反應(yīng)液酶液

用量20μL1μL

將混合好的測試反應(yīng)液分裝到 PCR 反應(yīng)管中,21uL/管。

3.加樣(樣本處理區(qū))

將步驟 1 提取的核酸、陽性質(zhì)控品、陰性質(zhì)控品各取 4μL,分別加入相應(yīng)的反應(yīng)管中,蓋好管蓋,混勻,

短暫離心。

4.PCR 擴(kuò)增(核酸擴(kuò)增區(qū))

4.1將待檢測反應(yīng)管置于熒光定量 PCR 儀反應(yīng)槽內(nèi);

4.2設(shè)置好通道、樣品信息,反應(yīng)體系設(shè)置為 25μL;熒光通道選擇: 檢測通道(Reporter Dye)FAM, 淬滅通道(Quencher Dye)NONE,ABI 系列儀器請(qǐng)勿選擇 ROX 參比熒光,選擇 None 即可。

4.3推薦循環(huán)參數(shù)設(shè)置:

步驟循環(huán)數(shù)溫度時(shí)間收集熒光信號(hào)

11 cycle95℃10min

240 cycles94℃15sec

55℃30sec

5.結(jié)果分析判定

5.1結(jié)果分析條件設(shè)定

設(shè)置Baseline 和 Threshold:一般直接按機(jī)器自動(dòng)分析的結(jié)果分析,當(dāng)曲線出現(xiàn)整體傾斜時(shí),根據(jù)分析后圖像調(diào)節(jié) Baseline 的 start 值(一般可在 3~15 范圍內(nèi)調(diào)節(jié))、stop 值(一般可在 5~20 范圍內(nèi)調(diào)節(jié)),以及 Threshold 的 Value 值(上下拖動(dòng)閾值線至高于陰性對(duì)照),重新分析結(jié)果。

5.2結(jié)果判斷

陽性:檢測通道 Ct 值≤35,且曲線有明顯的指數(shù)增長曲線;

可疑:檢測通道 35<Ct 值≤38,建議重復(fù)檢測,如果檢測通道仍為 35<Ct 值≤38,且曲線有明顯的增長曲線, 判定為陽性,否則為陰性;

陰性:樣本檢測結(jié)果 Ct 值>38 或無 Ct 值。

6.質(zhì)控標(biāo)準(zhǔn)

陰性質(zhì)控品:Ct>38 或無 Ct 值顯示;

陽性質(zhì)控品:擴(kuò)增曲線有明顯指數(shù)生長期,且 Ct 值≤32; 以上條件應(yīng)同時(shí)滿足,否則實(shí)驗(yàn)視為無效。

7.檢測方法的局限性

1.樣本檢測結(jié)果與樣本收集、處理、運(yùn)送以及保存質(zhì)量有關(guān);

2.樣本提取過程中沒有控制好交叉污染,會(huì)出現(xiàn)假陽性結(jié)果;

3.陽性對(duì)照、擴(kuò)增產(chǎn)物泄漏,會(huì)導(dǎo)致假陽性結(jié)果;

4.病原體在流行過程中基因突變、重組,會(huì)導(dǎo)致假陰性結(jié)果;

5.不同的提取方法存在提取效率差異,會(huì)導(dǎo)致假陰性結(jié)果;

6.試劑運(yùn)輸,保存不當(dāng)或試劑配制不準(zhǔn)確引起的試劑檢測效能下降,出現(xiàn)假陰性或定量檢測不準(zhǔn)確的結(jié)果;

7.本檢測結(jié)果僅供參考,如須確診請(qǐng)結(jié)合臨床癥狀以及其他檢測手段。

【注意事項(xiàng)】

1.所有操作嚴(yán)格按照說明書進(jìn)行;

2.試劑盒內(nèi)各種組分使用前應(yīng)自然融化,完-全混勻并短暫離心;

3.反應(yīng)液應(yīng)避光保存;

4.反應(yīng)中盡量避免氣泡存在,管蓋需蓋緊;

5.使用一次性吸頭、一次性手套和各區(qū)專用工作服;

6.樣本處理、試劑配制、加樣需在不同區(qū)進(jìn)行,以免交叉污染;

7.實(shí)驗(yàn)完畢后用 10%次氯酸或 75%酒精或紫外燈處理工作臺(tái)和移液器;

8.試劑盒里所有物品應(yīng)視為污染物對(duì)待,并按照《微生物生物醫(yī)學(xué)實(shí)驗(yàn)室生物安全通則》進(jìn)行處理。

【參考文獻(xiàn)】

[1]趙繼勛.Ⅰ群禽腺病毒感染的流行病學(xué)探究與防控認(rèn)識(shí)[J]. 北方牧業(yè), 2017(6): 18.

[2]楚電峰, 劉相娥, 薄智勇, 等.Ⅰ群禽腺病毒的流行病學(xué)和防控研究現(xiàn)狀[J]. 中國動(dòng)物檢疫, 2017,34(5): 86-89.

[3]王亞楠, 韓濤, 李純玲, 等. 禽腺病毒Ⅰ群的研究現(xiàn)狀[J]. 中國動(dòng)物保健, 2017, 19(1): 61-64.

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