亮氨酸氨基肽酶（Leucine Aminopeptidase, LAP）
試劑盒說明書
分光光度法 50 管/48 樣
正式測定前務(wù)必取 2-3 個預(yù)期差異較大的樣本做預(yù)測定測定意義：
LAP 是一類能水解肽鏈N-末端為亮氨酸的酶，廣泛存在于肝、腎、胰等組織中，尤其以肝臟中含量最為豐富。各類肝病患者因肝細胞損傷，血清LAP 的活性均有不同程度的升高，因此，血清 LAP 活性的檢測能從不同側(cè)面反映各種肝病的發(fā)生和發(fā)展。
測定原理：
LAP 分解L-亮氨酰對硝基苯胺生成對硝基苯胺，后者在 405nm 有最大吸收峰，通過測定吸光值升高速率來計算LAP 活性。
組成：
產(chǎn)品名稱 | BH6005-50T/48S | Storage |
提取液：液體 | 50ml | 4℃ |
試劑一：液體 | 40ml | 4℃ |
試劑二：粉劑 | 1 瓶 | -20℃ |
說明書 | 1 份 |
自備儀器和用品：
可見分光光度計、臺式離心機、水浴鍋、可調(diào)式移液器、1ml 玻璃比色皿、研缽、冰和蒸餾水。
樣本的前處理：
1、細菌、細胞或組織樣品的制備：
細菌或培養(yǎng)細胞：先收集細菌或細胞到離心管內(nèi)，離心后棄上清；按照細菌或細胞數(shù)量（104 個）：提取液體積（ml）為 1000~5000：1 的比例（建議 2000 萬細菌或細胞加入 1ml 提取液），超聲波破碎細菌或細胞（冰浴，功率 20％或 200W，超聲 3s，間隔 10s，重復(fù) 30 次）；8000g 4℃離心 10min，取上清，置冰上待測。
組織：按照組織質(zhì)量（g）：提取液體積(ml)為 1：5~10 的比例（建議稱取約 0.1g 組織，加入 1ml 提取液），進行冰浴勻漿。8000g 4℃離心 10min，取上清，置冰上待測。
2、血清（漿）樣品：直接檢測。
LAP 測定步驟：
1、分光光度計預(yù)熱 30min 以上，調(diào)節(jié)波長至 405nm，蒸餾水調(diào)零。
2、將試劑二轉(zhuǎn)移至試劑一中充分溶解（如較難溶解，可 50℃水浴加熱約 30min 促進溶解）；在 37℃
（哺乳動物）或 25℃（其它物種）水浴 10min 以上；用不完的試劑分裝后-20℃保存，禁止反復(fù)凍融。
3、在微量石英比色皿或 96 孔板中加入 250μl 樣本和 750μl 試劑一，混勻后立即記錄 405nm 處初始吸光值A1 和 2min 后的吸光值A2，計算ΔA=A2-A1。
注意事項：若ΔA 大于 0.5，需將酶液用提取液稀釋，計算公式中乘以相應(yīng)稀釋倍數(shù)。使 A2-A1 小于
0.5，可提高檢測靈敏度。
LAP 活力單位的計算：
1、血清（漿）LAP 活力的計算:
單位的定義：每ml 血清（漿）每分鐘生成 1 nmol 的對硝基苯胺定義為一個酶活力單位。
LAP（nmol/min/ml）＝[ΔA×V 反總÷（ε×d）×109]÷V 樣÷T=205.8×ΔA 2、組織、細菌或細胞中LAP 活力的計算:
（1） 按樣本蛋白濃度計算：
單位的定義：每mg 組織蛋白每分鐘生成 1 nmol 對硝基苯胺定義為一個酶活力單位。
LAP（nmol/min /mg prot）＝[ΔA×V 反總÷（ε×d）×109]÷(V 樣×Cpr) ÷T=205.8×ΔA÷Cpr
（2） 按樣本鮮重計算：
單位的定義：每g 組織每分鐘生成 1 nmol 對硝基苯胺定義為一個酶活力單位。
LAP（nmol/min /g 鮮重）＝[ΔA×V 反總÷（ε×d）×109]÷(W× V 樣÷V 樣總) ÷T=205.8×ΔA÷W
（3） 按細菌或細胞密度計算：
單位的定義：每 1 萬個細菌或細胞每分鐘生成 1 nmol 對硝基苯胺定義為一個酶活力單位。
LAP（nmol/min /104 cell）＝[ΔA×V 反總÷（ε×d）×109]÷(2000×V 樣÷V 樣總) ÷T=0.103×ΔA
V 反總：反應(yīng)體系總體積，1×10-3 L；ε：對硝基苯胺摩爾消光系數(shù)，9.72×103 L / mol /cm；d：比色皿光徑，1cm；V 樣：加入樣本體積，0.25 ml；V 樣總：加入提取液體積，1 ml；T：反應(yīng)時間，2 min；Cpr：樣本蛋白質(zhì)濃度，mg/ml；W：樣本質(zhì)量，g；2000：細菌或細胞總數(shù)，2000 萬。
