伯樂電泳儀使用方法及注意事項

伯樂電泳儀使用方法

1. 準備工作

• 材料準備：

• 準備好凝膠材料（瓊脂糖或聚丙烯酰胺）。

• 準備電泳緩沖液（如TBE或TAE）。

• 準備待分析的樣品（DNA、RNA或蛋白質）。

2. 制備凝膠

1. 溶解凝膠材料：

• 根據需要稱取適量的瓊脂糖或聚丙烯酰胺。

• 將其加入緩沖液中，加熱至溶解。

2. 倒入模具：

• 將溶解后的凝膠倒入電泳模具，插入梳子以形成樣品孔，待凝膠固化。

3. 裝配電泳儀

1. 去除梳子：

• 凝膠固化后小心取出梳子，形成樣品孔。

2. 放置凝膠：

• 將凝膠放入電泳槽中，確保其與緩沖液接觸。

3. 加入緩沖液：

• 在凝膠上方和槽內加入適量的電泳緩沖液，確保樣品孔被覆蓋。

4. 加樣

1. 準備樣品：

• 將樣品與上樣緩沖液混合，準備加樣。

2. 加樣：

• 使用移液器將樣品小心地加入到樣品孔中，避免樣品混入相鄰孔。

5. 運行電泳

1. 連接電源：

• 確保電源與電泳儀連接正確。

2. 設置電壓：

• 根據實驗需求設置適合的電壓（一般為80-150 V）。

3. 啟動電泳：

• 打開電源，觀察電泳過程中的樣品遷移情況。

6. 觀察與終止電泳

• 監(jiān)測樣品的遷移，適時記錄電泳時間。

• 電泳結束后，關閉電源，小心取出凝膠。

7. 后處理

1. 染色：

• 根據需要使用染色液（如EB或SYBR）染色樣品。

2. 成像：

• 使用成像設備記錄電泳結果。

注意事項

1. 安全性：

• 確保電源線無損壞，避免接觸水分，操作時注意電氣安全。

2. 樣品量：

• 加樣時避免過量，以免影響分離效果。

3. 緩沖液：

• 確保緩沖液配比正確，以保證分離效果的可靠性。

4. 電泳時間與電壓：

• 根據樣品類型和凝膠厚度選擇合適的電泳時間和電壓，避免過度電泳導致樣品擴散。

5. 觀察進度：

• 在電泳過程中，適時觀察樣品的遷移情況，確保實驗進展符合預期。

6. 凝膠處理：

• 在取出凝膠時小心，避免損壞凝膠結構。

遵循以上使用方法和注意事項，可以有效提高電泳實驗的成功率和結果的可靠性。