谷胱甘肽過氧化物酶(GPX)活性檢測試劑盒
(可見分光光度法)
產(chǎn)品貨號:BA1115
產(chǎn)品規(guī)格:50管/24樣
產(chǎn)品簡介:
谷胱甘肽過氧化物酶(glutathione peroxidase, GSH-Px/GPX)是機(jī)體內(nèi)廣泛存在的一種重要的過氧化物分解酶。GPX能夠催化還原型谷胱甘肽(GSH)生成氧化型谷胱甘肽(GSSG),使有毒的過氧化氫還原成無毒的羥基化合物。
GPX催化H2O2氧化GSH,產(chǎn)生GSSG,GSH能與DTNB生成在412nm處有特征吸收峰的化合物,412nm下吸光度的下降即可反應(yīng)GPX的活性。
注意:實(shí)驗(yàn)之前建議選擇2-3個(gè)預(yù)期差異大的樣本做預(yù)實(shí)驗(yàn)。如果樣本吸光值不在測量范圍內(nèi)建議稀釋或者 增加樣本量進(jìn)行檢測。
產(chǎn)品內(nèi)容:
試劑名稱 | 規(guī)格 | 保存條件 |
提取液 | 液體40mL×1瓶 | 2-8℃ |
試劑一 | 粉劑×1瓶 | 2-8℃ |
試劑二 | 粉劑×1瓶 | 2-8℃ |
試劑三 | 液體20 μL×1支 | 2-8℃ |
試劑四 | 液體60mL×1瓶 | 2-8℃ |
試劑五 | 液體15mL×1瓶 | 2-8℃ |
試劑六 | 液體15mL×1瓶 | 2-8℃ |
標(biāo)準(zhǔn)品 | 粉劑×1支 | 2-8℃ |
溶液的配制:
1. 試劑一:臨用前加入5.5mL蒸餾水溶解;
2. 試劑二:臨用前加入6.6mL蒸餾水充分溶解待用;
3. 試劑三:液體置于試劑瓶內(nèi)EP管中。臨用前按1μL試劑三:1mL蒸餾水的比例稀釋試劑三,現(xiàn)用現(xiàn)配;
4. 試劑四:瓶底若有結(jié)晶可50℃水浴溶解,此溶液為飽和溶液,若底部最終還有結(jié)晶,吸取上清使用即可;
5. 標(biāo)準(zhǔn)品:10mg還原型谷胱甘肽。臨用前加入1.62mL蒸餾水溶解為20μmol/mL的標(biāo)準(zhǔn)溶液備用。
需自備的儀器和用品:
可見分光光度計(jì)、天平、臺式離心機(jī)、1mL玻璃比色皿、可調(diào)式移液槍、研缽/勻漿器、EP管。
操作步驟:
一、粗酶液的提?。?/span>
1. 組織:按照組織質(zhì)量(g):提取液體積(mL)為 1:5~10的比例(建議稱取0.05g組織,加入1mL提取液)進(jìn)行冰浴勻漿。10000rpm,4℃離心10min,取上清置冰上待測(如上清不清澈,再離心3min)。
2. 細(xì)菌、真菌:按照細(xì)胞數(shù)量104個(gè):提取液體積(mL)500~1000:1的比例,建議500萬細(xì)胞加入1mL提取液),冰浴超聲波破碎細(xì)胞(率300w,超聲3 s,間隔7s,總時(shí)間3min)然后10000rpm,4℃,離心10min,取上清置冰上待測(如上清不清澈,再離心3min)。
3. 血清(漿)等液體:直接測定。
二、測定步驟:
1. 分光光度計(jì)預(yù)熱30min以上,調(diào)節(jié)波長至412nm,蒸餾水調(diào)零。
2. 將20μmol/mL標(biāo)準(zhǔn)液用提取液稀釋為0.2μmol/mL的標(biāo)準(zhǔn)溶液。再吸取100μL標(biāo)準(zhǔn)溶液與400μL試劑四混勻待用,此標(biāo)準(zhǔn)液混合物的濃度為0.04μmol/mL。標(biāo)準(zhǔn)液混合物現(xiàn)用現(xiàn)配。
3. 樣本混合物:將150μL樣本與150μL試劑一混合后室溫放置5min。
4. 操作表:(在1.5mL離心管中依次加入下列試劑)
測定管 | 對照管 | |
樣品混合物(μL) | 100 | - |
試劑二(μL) | 100 | 100 |
37℃下預(yù)熱5min | ||
試劑三(μL) | 100 | 100 |
37℃下反應(yīng)5min | ||
試劑四(mL) | 1 | 1 |
樣品混合物(μL) | - | 100 |
4000rpm常溫離心5min,取上清。
試劑名稱(μL) | 測定管 | 對照管 | 標(biāo)準(zhǔn)管 | 空白管 |
蒸餾水 | 100 | 100 | 100 | 100 |
提取液 | - | - | - | 100 |
上清液 | 500 | 500 | - | - |
標(biāo)準(zhǔn)液混合物 | - | - | 500 | - |
試劑四 | - | - | - | 400 |
試劑五 | 200 | 200 | 200 | 200 |
試劑六 | 200 | 200 | 200 | 200 |
混勻后盡快測定412nm下的吸光度,分別記為A測定管、A對照管、A標(biāo)準(zhǔn)管、A空白管。計(jì)算△A測定=A對照管-A測定管,△A標(biāo)準(zhǔn)=A標(biāo)準(zhǔn)管-A空白管。 |
三:GPX活性計(jì)算:
1. 抑制百分率的計(jì)算
抑制百分率=(A對照管-A測定管) ÷(A對照管-A空白管)×
盡量使樣品的抑制百分率在30-70%范圍內(nèi),越靠近50%越準(zhǔn)確。如果計(jì)算出來的抑制百分率小于30%或大于70%,則通常需要調(diào)整加樣量后重新測定。如果測定出來的抑制百分率偏高,則需適當(dāng)稀釋樣品;如果測定出來的抑制百分率偏低,則需重新準(zhǔn)備濃度比較高的待測樣品。
2. GPX活性計(jì)算
(1)按蛋白濃度計(jì)算
活力單位定義:每mg蛋白在反應(yīng)體系中每分鐘催化1nmol GSH氧化定義為一個(gè)酶活力單位。
GPX (U/mg prot) =ΔA測定÷(△A標(biāo)準(zhǔn)÷C標(biāo))×1000×V酶促÷(Cpr×V樣)÷T
=208×ΔA測定÷△A標(biāo)準(zhǔn)÷Cpr。
(2)按樣本鮮重計(jì)算
活力單位定義:每g樣品在反應(yīng)體系中每分鐘催化1nmol GSH氧化定義為一個(gè)酶活力單位。
GPX (U/g 鮮重)= ΔA測定÷(△A標(biāo)準(zhǔn)÷C標(biāo))×1000×V酶促÷(V樣÷V樣總×W)÷T
=208×ΔA測定÷△A標(biāo)準(zhǔn)÷W。
(3)按細(xì)胞數(shù)量計(jì)算
活力單位定義:每104個(gè)細(xì)胞在反應(yīng)體系中每分鐘催化1nmol GSH氧化定義為一個(gè)酶活力單位。
GPX (U/104 cell)= ΔA測定÷(△A標(biāo)準(zhǔn)÷C標(biāo))×1000×V酶促÷(細(xì)胞數(shù)量×V樣÷V樣總)÷T
=208×ΔA測定÷△A標(biāo)準(zhǔn)÷細(xì)胞數(shù)量。
(4)按液體體積計(jì)算
活力單位定義:每毫升液體在反應(yīng)體系中每分鐘催化1nmol GSH氧化定義為一個(gè)酶活力單位。
GPX (U/mL)= ΔA測定÷(△A標(biāo)準(zhǔn)÷C標(biāo))×1000×V酶促÷V樣÷T=260×ΔA測定÷△A標(biāo)準(zhǔn)。
C標(biāo):標(biāo)準(zhǔn)液混合物的濃度:0.04μmol/mL;V酶促:酶促反應(yīng)體系體積,1.3mL;V樣:樣本混合物中含有的樣本體積,0.05mL;V樣總:提取液體積,1mL;Cpr:上清液蛋白濃度(mg/mL);T:反應(yīng)時(shí)間,5min;細(xì)胞數(shù)量:以萬計(jì);W:樣品質(zhì)量,g;1000:換算系數(shù),1μmol=1000nmol。
注意事項(xiàng):
1. 吸光度若大于1.2時(shí),建議將樣本用提取液稀釋后進(jìn)行測定。
2. 建議一次不要做過多樣本以免檢測時(shí)間過長影響顯色,使測定不準(zhǔn)確。
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