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化繁為簡!小翊帶你輕松搞定qPCR數(shù)據(jù)分析

2019-7-29  閱讀(2359)

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化繁為簡!小翊帶你輕松搞定qPCR數(shù)據(jù)分析

 

熒光定量PCR(qPCR)是實(shí)驗(yàn)室常用的一種技術(shù),該技術(shù)可以應(yīng)用于基因表達(dá)分析、基因分型、 病原體檢測、SNP分析等。 qPCR實(shí)驗(yàn)操作簡單,原理易懂,但面對一堆凌亂的數(shù)據(jù),如何進(jìn)行結(jié)果分析成了頭疼的問題,今天小翊將帶你學(xué)會如何化繁為簡,輕松獲得可以發(fā)表SCI的數(shù)據(jù)!

qPCR常用的分析方法有相對定量和定量,需根據(jù)不同的實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)進(jìn)行選擇。本期我們關(guān)注的是qPCR常見的應(yīng)用—基因表達(dá)分析,一般選擇相對定量法。

1.實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)

假設(shè)目前需要研究光誘導(dǎo)對擬南芥AtSUC2基因表達(dá)的影響,以未經(jīng)過任何處理的擬南芥植株作為對照組,實(shí)驗(yàn)組為經(jīng)過一定光誘導(dǎo)處理過的植株,分別提取RNA進(jìn)行反轉(zhuǎn)錄,以得到的cDNA為模板,選擇擬南芥GAPDH基因作為內(nèi)參,進(jìn)行qPCR實(shí)驗(yàn)。

需要設(shè)置的qPCR孔如下:

 

1)NTC用來驗(yàn)證PCR體系中是否存在污染;

2)NRT是指用未經(jīng)反轉(zhuǎn)錄的RNA作為模板,是對gDNA殘留的控制;

3)內(nèi)參基因用來校正因樣品初始濃度不同而造成的差異;

4)而對照樣品的選擇一般有以下幾種情況:

♦ 某處理方法對基因表達(dá)的影響,將未處理的樣本作為參照樣本;

♦ 檢測基因在不同時間的表達(dá)差異,將0時刻的樣本作為參照樣本;

♦ 比較基因在不同組織中的表達(dá)差異,人為選定一個組織作為參照樣本。

這里需要注意的一點(diǎn)是,上面每個材料設(shè)置了3個PCR孔1、2、3,這是PCR重復(fù),技術(shù)性重復(fù),是為了消除操作誤差,正確評估擴(kuò)增效率。此外還需設(shè)置生物學(xué)重復(fù),即不同的材料(時間、植株、批次、反應(yīng)板)做的同一實(shí)驗(yàn),目的是校準(zhǔn)生物學(xué)誤差,分析處理是否具有統(tǒng)計(jì)意義。具體到本例中,實(shí)驗(yàn)組和對照組都需要至少處理兩組擬南芥樣本(A、B、C分別提RNA進(jìn)行逆轉(zhuǎn)錄,再做qPCR,統(tǒng)計(jì)時以三個生物學(xué)重復(fù)的平均值進(jìn)行分析。

2.結(jié)果分析——△△Ct法

△△Ct法的特點(diǎn)是只依靠Ct值來計(jì)算結(jié)果,但前提是目的基因與內(nèi)參基因的擴(kuò)增效率較為一致并且都在90-110%之間。具體的計(jì)算公式為:

△Ct= Ct(目的基因)- Ct(內(nèi)參基因)

△△ Ct= △Ct(實(shí)驗(yàn)組)- △Ct(對照組)

RQ=2^-△△Ct,RQ即為研究的目的基因在處理的樣本中相比對照組的相對表達(dá)量。

假設(shè)上面研究光誘導(dǎo)對擬南芥AtSUC2基因表達(dá)影響的實(shí)驗(yàn)中,qPCR的結(jié)果如下:

 

 

實(shí)驗(yàn)組(復(fù)孔Ct平均值)

對照組(復(fù)孔Ct平均值)

A

B

C

A

B

C

AtSUC2

23.60

23.00

23.15

25.80

26.32

27.00

GAPDH

16.75

16.80

16.72

16.75

16.50

16.00

△Ct

6.85

6.20

6.43

9.05

9.82

11.00

2^-△Ct

0.00867

0.01360

0.01160

0.00189

0.00111

0.00049

 

 

 

 

0.00116

2^-△△Ct

7.47285

11.72617

9.99814

1.62637

0.95373

0.42093

Ave

9.73238

1.00035

SEM

2.13907

0.60407

計(jì)算時,首先我們把對照組的2^-△Ct數(shù)據(jù)求平均值(上圖中為0.00116),然后用2^-△Ct中的每一個數(shù)據(jù)除以這個平均值,即得到2^-△△Ct的值,后再整理得到平均值與標(biāo)準(zhǔn)差,表明實(shí)驗(yàn)組目的基因表達(dá)量相比對照組提高了約9.73倍。結(jié)果用Graphpad軟件作圖如下:

 

利用軟件的t檢驗(yàn)計(jì)算出P value=0.0024<0.05,表明具有統(tǒng)計(jì)學(xué)差異,結(jié)果可信。

3.結(jié)果分析——雙標(biāo)準(zhǔn)曲線法

在實(shí)際應(yīng)用中,由于目的基因與內(nèi)參基因的擴(kuò)增效率常常是不同的,需要重新設(shè)計(jì)引物,優(yōu)化反應(yīng)條件使得擴(kuò)增效率相同,但其實(shí)我們還可以選擇更方便的雙標(biāo)準(zhǔn)曲線法。

這里我們先了解下定量的分析方法。具體的步驟是先通過PCR擴(kuò)增目的片段,然后將目的片段插入克隆載體中,提取重組質(zhì)粒,待測序正確后即可作為標(biāo)準(zhǔn)品。質(zhì)粒DNA量可用Nanodrop等儀器測定,通過拷貝數(shù)換算公式轉(zhuǎn)換成具體的質(zhì)粒拷貝數(shù),然后進(jìn)行倍比稀釋后擴(kuò)增。以標(biāo)準(zhǔn)品拷貝數(shù)的對數(shù)值為橫坐標(biāo),以測得的Ct值為縱坐標(biāo)繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,根據(jù)未知樣品的Ct值就可以計(jì)算出其拷貝數(shù)。

拷貝數(shù)計(jì)算公式:拷貝數(shù)=(質(zhì)量÷相對分子質(zhì)量)×6.02×1023。

雙標(biāo)準(zhǔn)曲線法是通過分別構(gòu)建目的基因與內(nèi)參基因的標(biāo)準(zhǔn)品,進(jìn)行定量并制作標(biāo)準(zhǔn)曲線,計(jì)算出未知樣品拷貝數(shù)之后再進(jìn)行比較,因此準(zhǔn)確性更高。

具體的計(jì)算公式為:

Q=目的基因拷貝數(shù)/內(nèi)參基因拷貝數(shù)

RQ=Q實(shí)驗(yàn)/Q對照

假設(shè)上面研究光誘導(dǎo)對擬南芥AtSUC2基因表達(dá)影響的實(shí)驗(yàn)中,分別構(gòu)建AtSUC2GAPDH的標(biāo)準(zhǔn)品,制作標(biāo)準(zhǔn)曲線如下:

 

待測樣品目的基因和內(nèi)參基因的Ct值如下:

 

 

實(shí)驗(yàn)組

對照組

 

A

B

C

A

B

C

AtSUC2

Ct

23.60

23.00

23.15

25.80

26.32

27.00

Copies

2238.72

2884.03

3083.19

466.34

321.88

198.15

GAPDH

Ct

16.75

16.80

16.72

16.75

16.50

16.00

Copies

218776.16

213796.21

223872.11

219785.99

260615.35

365594.79

Q

0.01023

0.01349

0.01377

0.00212

0.00124

0.00054

 

 

 

 

0.00130

RQ

7.87148

10.37664

10.59392

1.63214

0.95007

0.41692

Ave

9.61401

0.99971

SEM

1.51298

0.60913

計(jì)算時,首先將目的基因與內(nèi)參基因的Ct值代入標(biāo)準(zhǔn)曲線的線性關(guān)系中,獲得目的基因與內(nèi)參基因分別在實(shí)驗(yàn)組和對照組中的拷貝數(shù),然后按公式Q=目的基因拷貝數(shù)/內(nèi)參基因拷貝數(shù),使得目的基因的表達(dá)量均一化。后按公式RQ=Q實(shí)驗(yàn)/Q對照,計(jì)算出RQ= 9.71,表示目的基因在實(shí)驗(yàn)組的表達(dá)量比對照組上升9.71倍。

結(jié)果用Graphpad軟件作圖如下:

 

利用軟件的t檢驗(yàn)計(jì)算出P value=0.0008<0.05,表明具有統(tǒng)計(jì)學(xué)差異,結(jié)果可信。

本期的qPCR數(shù)據(jù)分析就到這里結(jié)束了,下面小翊為你推薦一波產(chǎn)品,讓你的實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)更加準(zhǔn)確可靠,快來pick吧!

 

產(chǎn)品名稱

產(chǎn)品編號

規(guī)格

價格(元)

*(元)

Hifair® Ⅲ 1st Strand cDNA Synthesis SuperMix for qPCR (gDNA digester plus)

11141ES60

100 T

1383

798

Hifair® qPCR SYBR® Green Master Mix (No Rox )

11201ES08

5 mL

740

498

Hifair® qPCR SYBR® Green Master Mix (Low Rox Plus) 

11202ES08

5 mL

740

498

Hifair® qPCR SYBR® Green Master Mix (High Rox Plus) 

11203ES08

5 mL

740

498

Hieff UNICON® Power qPCR SYBR Green Master Mix ( 抗體法,No Rox)

11195ES08

5 mL

1653

663

Hieff UNICON® Power qPCR SYBR Green Master Mix ( 抗體法,Low Rox)

11196ES08

5 mL

1653

663

Hieff UNICON® Power qPCR SYBR Green Master Mix ( 抗體法,High Rox)

11197ES08

5 mL

1653

663

Hieff UNICON® qPCR SYBR Green Master Mix ( 抗體法,No Rox)

11198ES08

5 mL

1466

586

Hieff UNICON® qPCR SYBR Green Master Mix ( 抗體法,Low Rox)

11199ES08

5 mL

1466

586

Hieff UNICON® qPCR SYBR Green Master Mix ( 抗體法,High Rox)

11200ES08

5 mL

1466

586

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