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- 80230ES01 產(chǎn)品型號
- Yeasen/翌圣生物 品牌
- 生產(chǎn)商 廠商性質(zhì)
- 上海市 所在地
訪問次數(shù):513更新時間:2024-12-25 09:00:26
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- 網(wǎng)址:
- www.yeasen.com
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產(chǎn)地類別 | 國產(chǎn) | 應(yīng)用領(lǐng)域 | 醫(yī)療衛(wèi)生,生物產(chǎn)業(yè) |
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產(chǎn)品描述
翌圣 HET高通量水平電泳槽是用來對核酸樣本進行瓊脂糖凝膠電泳的裝置,可用于生化分析研究中對電荷粒子進行分離、提純或制備。適合鑒定、分離、制備 DNA,以及測定其分子量。本品配置多用途制膠槽,可以倒置6.5×6.5 cm、6.5×13 cm、13×6.5 cm、13×13 cm等不同尺寸的凝膠。配備9把不同齒數(shù)和厚度的梳子,制備好的各種大小的瓊脂糖凝膠均可以放在水平電泳槽的平臺上進行電泳。
產(chǎn)品特點
高透明度、高強度
耐高溫、耐腐蝕、不易磨損
電極導(dǎo)電性好
承載凝膠面積大
結(jié)構(gòu)信息
基本參數(shù)
主槽尺寸 | 300×155×100 mm |
托盤面積(W*L) | 標(biāo)配:13×13 cm, 13×6.5 cm 6.5×13 cm, 6.5×6.5 cm |
梳子 | 7+7/14孔,0.75 mm厚 |
9+9/19孔,0.75 mm厚 | |
12+12/27孔,1.0 mm厚 | |
7+7/14孔, 1.5 mm厚 | |
9+9/19孔, 1.5 mm厚 | |
3+3/3+2孔, 2.0 mm厚 | |
可同時制膠數(shù) | 1-4塊 |
緩沖液 | 1000 mL |
最大電壓 | 200 V |
最大功率 | 40 W |
操作指南
1) 將制膠架放在一個水平的桌面上,然后將凝膠托盤放到制膠架中特定的區(qū)域,之后將梳子插入相應(yīng)的孔位。根據(jù)需要,可選擇四種規(guī)格的凝膠:13×13 cm,13×6.5 cm,6.5×13 cm,6.5×6.5 cm;
2) 根據(jù)被分離目的帶的大小,用TAE或TBE電泳緩沖液配制適宜濃度的瓊脂糖溶液,輕輕混勻后放入微波爐或沸水浴中進行加熱融化。然后加入相應(yīng)的核酸染料,或后續(xù)將瓊脂糖膠泡在核酸染料中,進行觀察;
3) 待凝膠稍微冷卻后,將融化好的瓊脂糖溶液緩慢倒入凝膠托盤中,膠厚度以3~5 mm 為宜;
【注】:膠內(nèi)不能有氣泡。
4) 室溫下放置30~45 min(待凝膠略凝結(jié)時,也可以放入4℃冰箱,縮短凝結(jié)時間),待凝膠凝結(jié)后,小心拔出梳子,將凝膠放入電泳槽內(nèi)(也可將凝膠托盤一并放入電泳槽內(nèi)),加樣孔一側(cè)靠近陰極(黑色一端)。
5) 向電泳槽內(nèi)加入電泳緩沖液,至少沒過凝膠1-2 mm,TAE或TBE緩沖液應(yīng)及時更換;
6) 用移液槍將樣品加入樣品孔內(nèi);
【注】:核酸樣品提前混入一定量的上樣緩沖液,同時加上Marker作為對照。
7) 加樣完畢后,蓋好電泳槽上蓋(根據(jù)極性,紅色為“+"極,黑色為“-"極),連接電泳儀電源。給予5~8V/cm 的電壓(建議:每厘米凝膠電壓不超過8V,若電壓過高,凝膠液過熱會導(dǎo)致分辨率降低,只有在低電壓時,線性核酸分子的電泳遷移率與所用電壓成正比),其中距離以陽極至陰極之間的測量為準(zhǔn)。
【注】:電泳時間取決于膠的長度、電壓和樣品片段的大?。耗z越長,電壓越低,樣品片段越大,所需時間就越長。
8) 根據(jù)指示劑判核酸遷移位置,電泳完畢,關(guān)上電源,雙手按住正負(fù)極指示鈕,四指提上蓋底部邊緣突出部分,打開上蓋后取出凝膠。直接放在凝膠成像系統(tǒng)中觀察,或?qū)傊悄z泡在核酸染料一定時間后進行觀察。
維護保養(yǎng)
1. 產(chǎn)品應(yīng)貯存在溫度-20℃~55℃、相對濕度不超過93%、無腐蝕性氣體和通風(fēng)良好的室內(nèi);
2. 電極頭弄濕后,請盡快用吸水紙擦干,以防生銹;
3. 儀器使用后,請將凝膠托盤、下槽、制膠器和梳子小心清洗干凈;
4. 請不要讓電泳儀接觸酸或堿溶液,以防對儀器造成腐蝕,損壞儀器;
5. 運輸、貯存時請勿重物壓。搬動時,請輕拿輕放。
故障分析
故障現(xiàn)象 | 故障分析 | 故障處理 |
開機后樣品 無遷移 | 電泳緩沖液多次使用后,緩沖能力減弱,從而影響電泳效果 | 經(jīng)常更換電泳緩沖液。 |
電泳條件不合適 | 電壓不應(yīng)超過8 V/cm;選擇合適緩沖能力的緩沖液。 | |
核酸上樣量過多 | 減少樣品上樣量。 | |
樣品含鹽過高 | 電泳前通過乙醇沉淀除去多余。 | |
有蛋白污染 | 電泳前酚抽提除去蛋白。 | |
核酸變性 | 電泳前請勿高溫加熱樣品; 用20 mM NaCl緩沖液稀釋核酸。 | |
目的帶遷移 不規(guī)則 | 電泳條件不合適 | 電泳時電壓不應(yīng)該超過8 V/cm;經(jīng)常更換電泳緩沖液。 |
核酸變性 | 電泳前請勿高溫加熱樣品; 用20 mM NaCl緩沖液稀釋。 | |
目的帶弱 | 樣品上樣量不夠 | 增加樣品上樣量。 |
核酸降解 | 避免核酸酶的污染。 | |
凝膠成像系統(tǒng)波長選擇不正確 | 根據(jù)核酸染料的性質(zhì)選擇合適的儀器或波長進行凝膠成像。 | |
目的帶缺失 | 目的帶跑出凝膠 | 縮短電泳時間,降低電壓,增強凝膠濃度。 |
分子大小相近目的帶分不開 | 增加電泳時間,使用正確的凝膠濃度。 | |
核酸變性 | 電泳前請勿高溫加熱樣品; 用20 mM NaCl緩沖液稀釋。 | |
樣品泳道不直 | 凝膠沒有凝固 | 凝膠凝固至少30~40 min。 |
凝膠有氣泡 | 制膠時注意凝膠不能有氣泡。 | |
制膠時,梳子齒放歪了 | 重新制膠,確認(rèn)梳子放正。 | |
高分子量條帶清楚,低分子量條帶彌散 | 膠濃度低 | 使用合適濃度膠; 換用丙烯酰胺膠來分離。 |
樣品條帶彌散 | 樣品中的鹽濃度高 | 減少樣品鹽濃度。 |
電泳溫度太高 | 降低電壓或者重新配置緩沖液。 | |
上樣量太多 | 增加膠厚度或調(diào)整合適上樣量。 | |
樣品降解 | 重新準(zhǔn)備樣品。 |
HB220531