詳細介紹
氧化型低密度脂蛋白(OX-LDL)
人源性低密度脂蛋白(通過超速離心分離(1.019-1.063g/cc)純化)在PBS溶液中用5μM Cu2SO4 (氧化劑)37℃ 氧化 20 小時所得。最終通過加入過量EDTA-Na2終止氧化反應。通過瓊脂糖凝膠電泳對不同的LDL的遷移率進行分析。氧化型LDL的遷移速度是普通LDL的2倍。這種氧化型的LDL被廣泛用于研究類脂化合物代謝作用,但細胞凋亡誘導實驗除外。細胞凋亡誘導可選本公司所產(chǎn)高氧化程度低密度脂蛋白進行實驗。
氧化型低密度脂蛋白(OX-LDL)
濃度: 2.0mg/ml(蛋白質(zhì))
包裝: 經(jīng)膜過濾后在PH為7.4,含有1μM EDTA-Na2的PBS溶液中無菌保存;
來源: 銅離子氧化人源血漿LDL;
稀釋方式:PBS磷酸鹽緩沖液或細胞培養(yǎng)液;
注意事項:長時間的儲存后可能會產(chǎn)生沉淀,這種現(xiàn)象屬于正常情況。將溶液放入離心管中離心2分鐘將聚合物除去即可。氧化型LDL不穩(wěn)定,實驗時最hao現(xiàn)用現(xiàn)配,采用新鮮配置工作液。
慢病毒感染快速指南
1. 將目的細胞按 30%匯合度接種到 24 孔板,約 3-5×104細胞數(shù)/孔,不同細胞因為細胞大小不同細胞數(shù)量會不同,快速指南以細胞數(shù)量為 5×104為例,加入 500uL wan全培養(yǎng)基進行細胞培養(yǎng)。
2. 接種后 12-20h 感染陰性對照慢病毒(接種細胞至病毒感染細胞時間不宜太長,否則細胞增殖影響細胞密度不利用后期抗性篩選)。
3.加病毒量計算方法:(細胞數(shù)×MOI 值/病毒滴度)×103=病毒量(uL),加病毒量見下表。同時加入 Polybrene,每孔加 0.25uL,濃度為 10mg/mL Polybrene,細胞培養(yǎng)液中終濃度為5ug/mL。
4.感染 16-20h 后更換培養(yǎng)基,棄去培養(yǎng)基,每孔加入 500uL 新鮮的培養(yǎng)基。
5.感染后 48-96h 顯微鏡觀察熒光。(注:如果 48h-96h 期間細胞匯合度達到 100%,請及時傳代培養(yǎng))。
6.建議將 48 孔板細胞進行傳代,傳代 12 孔板,后繼續(xù)觀察熒光,根據(jù)細胞狀態(tài)和熒光細胞比例綜合判斷細胞感染最佳 MOI 值。一般選擇細胞生長良好,感染效率 80%左右的感染條件作為最佳感染條件。(注:100%熒光感染不一定為細胞最佳 MOI 值,因為可能會造成細胞慢病毒感染拷貝數(shù)太高,影響細胞狀態(tài)。