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LR 白色樹脂

使用 lr white 作為電子顯微鏡時，使用 lr white 作為專用電子顯微鏡的包埋樹脂，對環(huán)氧樹脂包埋體系只需做很少的改動。每個實驗室都有自己的嵌入時間表，但是我們在這里列出了一個 lr white 的典型時間表作為其使用的指南。固定: 如果只需要對最后的積木進行電鏡分析，則不應改變正常的固定。然而，如果需要良好的超微結構和廣泛的 lm 染色，那么我們發(fā)現(xiàn)在磷酸鹽緩沖液 ph 7.2中加入2.5% w/v 蔗糖是折衷多聚甲醛。單獨使用戊二醛和 karnovsky 的戊二醛-甲醛混合物可能會導致 lm 染色不均勻，有些染色不起作用或產(chǎn)生"假陽性"(如 pas) ，而正常的福爾馬林固定會產(chǎn)生不可接受的 em 超微結構。對于雙重 lm/em 應用，應該避免使用，因為它會對很多 lm 著色產(chǎn)生影響，但是在脫水的第一乙醇，1% 的磷鎢酸可以提高電子對比度，而不會對大多數(shù) lm 著色產(chǎn)生不利影響。如果塊僅用于專用電子顯微鏡，則可以使用。脫水: 分級乙醇系列是方法的選擇時，包埋’紅色白’。丙酮在樹脂體系中起著清除自由基的作用，因此固化時組織中留下的丙酮痕跡可以干擾這種聚合。因此，最好避免使用梯度丙酮系列和2,2- 二甲氧基丙烷(產(chǎn)生丙酮)。如果2,2- 二甲氧基丙烷的使用被認為是至關重要的，我們建議在滲透之前用持久的樹脂滲透或用干乙醇清洗組織，以盡量減少丙酮污染最終樹脂的機會。滲透: 極低的粘度的’lr 白’可以利用允許使用短的滲透時間或大的標本，但不是兩者！如果在此期間在60攝氏度進行4-6次“ lr 白"變化，1毫米立方體的動物組織將在大約3小時內被充分浸潤。然而，在室溫下徹夜浸潤，然后兩次短暫的樹脂變化通常會更方便。由于「 lr white 」的保質期長及提取率低，因此如有需要，樣本(例如儲存組織)可在4 °c 的樹脂中安全存放數(shù)星期。大塊的確比小塊的滲透時間長得多。

聚合: 帶有的樣品不應用促進劑“冷固化"。這個過程是強烈的放熱過程，組織的深色會導致局部熱量積聚，從而消除組織內部和周圍的局部問題。如果組織沒有固定，那么可以使用“ lr white"加速器進行治療。與光學顯微鏡的固化塊一樣，我們建議在聚合過程中冷卻模具，但無需將氧氣排除在固化塊表面之外。在聚合反應發(fā)生時，限制氧氣與樹脂的接觸是很重要的。實現(xiàn)膠囊型包埋方便的方法是使用明膠膠囊(可從瓊脂科學中獲得) ，填充到邊緣，然后將膠囊的另一半放在上面。

如果切割方向需要平面包埋，則樹脂表面必須用氧氣覆蓋，一個方便的方法是使用 jb-4型模具和卡盤，用于光學顯微鏡觀察，聚合后卡塊可能被鋸斷并重復使用。聚合時間和溫度是最終塊體物理特性的基礎，比未固化的環(huán)氧體系要高得多，我們強烈建議溫度為60 °c ± 2，持續(xù)20-24小時。有些烘箱不能如此嚴格地控制聚合溫度，如果面對過于脆弱的塊，這是第一個參數(shù)檢查。 lr 白色具有好的滲透力，可以穿透和軟化一些低密度聚乙烯膠囊。這會導致它們扭曲和崩潰。這兩個問題都可以通過使用明膠膠囊(00號膠囊的尺寸與普通聚乙烯膠囊的尺寸相似)來解決，而且這些膠囊更便宜，在聚合過程中也更容易密封。樹脂可以直接從冰箱中取出，與環(huán)氧樹脂不同，它在單體和聚合狀態(tài)下的毒性都很低。冷固化促進劑確實有一定的毒性風險，應避免與皮膚和眼睛接觸。冷固化促進劑應以每10毫升樹脂中一滴的速度使用，這會在10至20分鐘內引起聚合。如果聚合速度超過這一點，我們建議更仔細地測量一滴加速劑或更高容量的樹脂每滴制造商。修邊和切割: 修邊可以使用珠寶商、剃須刀或環(huán)氧樹脂塊在超微切割機上使用玻璃刀。切割的方式可以與使用玻璃刀或鉆石刀的環(huán)氧樹脂相同。切片染色: 所有常見的切片染色劑都能在“ lr 白色"樹脂包埋的組織上取得良好的效果。在乙醇或甲醇中形成的污漬應該避免，因為這些溶劑會使樹脂軟化，并且可以去除網(wǎng)格狀污漬。作為醋酸鈾酰的替代品，1% 的磷鎢酸已被證明是一種很好的通用染色劑，無論是作為塊狀染色劑(如前所述) ，還是作為切片染色劑。在電子顯微鏡中，初次接觸樹脂時，電子密度可能會減少，這被認為是因為從刀船或染色液中吸收了水分。這樣的稀釋沒有發(fā)生，標本在120kv 電子束下放置了3個小時，沒有明顯的損壞跡象。

 

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